Abstract
Autophagy is a major catabolic pathway in a eukaryotic cell, employed for cellular self-degradation of obsolete or damaged cytoplasmic components serving as a major quality control and recycling mechanism that supports cell survival. Autophagy is fundamentally a cytoprotective and pro-survival process yet in general, it has become clear through a number of studies that autophagy has an exceedingly contextual role in cancer biology; conditional on which phase, location or type of oncogenic trigger and/or therapy is under consideration, the role of autophagy could end up fluctuating from pro- to anti-tumourigenic. Numerous studies have revealed that, contingent on the photosensitiser under consideration, autophagy triggered by PDT either adds to therapy resistance (by suppressing cell death) or vulnerability (by enabling autophagic cell death). Beyond cell death regulation, cancer cell-associated autophagy also supports resistance against PDT by reducing anticancer immune effector mechanisms. In this review, we have concisely described the state-of-the-art and the prevailing gap-in-knowledge vis-à-vis the role of PDT-triggered autophagy in cancer therapy resistance or susceptibility.
Similar content being viewed by others
Abbreviations
- CD:
-
Cluster of differentiation
- CMA:
-
Chaperone-mediated autophagy
- CRT:
-
Calreticulin
- DAMP:
-
Damage-associated molecular pattern
- Ecto:
-
Surface exposed or surface tethered
- ER:
-
Endoplasmic reticulum
- HSP:
-
Heat-shock protein
- Hyp:
-
Hypericin
- ICD:
-
Immunogenic cell death
- IFN:
-
Interferon
- IL:
-
Interleukin
- PDT:
-
Photodynamic therapy
- Phox:
-
Photo-oxidative
- ROS:
-
Reactive oxygen species
References
W. L. Yen, D. J. Klionsky, How to live long and prosper: autophagy, mitochondria, and aging, Physiology (Bethesda), 2008, 23, 248–262.
H. Maes, N. Rubio, A. D. Garg, P. Agostinis, Autophagy: shaping the tumor microenvironment and therapeutic response, Trends Mol. Med., 2013, 19, 428–446.
D. J. Klionsky, F. C. Abdalla, H. Abeliovich, R. T. Abraham, A. Acevedo-Arozena, K. Adeli, L. Agholme, M. Agnello, P. Agostinis, J. A. Aguirre-Ghiso, H. J. Ahn, O. Ait-Mohamed, S. Ait-Si-Ali, T. Akematsu, S. Akira, H. M. Al-Younes, M. A. Al-Zeer, M. L. Albert, R. L. Albin, J. Alegre-Abarrategui, M. F. Aleo, M. Alirezaei, A. Almasan, M. Almonte-Becerril, A. Amano, R. Amaravadi, S. Amarnath, A. O. Amer, N. Andrieu-Abadie, V. Anantharam, D. K. Ann, S. Anoopkumar-Dukie, H. Aoki, N. Apostolova, G. Arancia, J. P. Aris, K. Asanuma, N. Y. Asare, H. Ashida, V. Askanas, D. S. Askew, P. Auberger, M. Baba, S. K. Backues, E. H. Baehrecke, B. A. Bahr, X. Y. Bai, Y. Bailly, R. Baiocchi, G. Baldini, W. Balduini, A. Ballabio, B. A. Bamber, E. T. Bampton, G. Banhegyi, C. R. Bartholomew, D. C. Bassham, R. C. Bast Jr., H. Batoko, B. H. Bay, I. Beau, D. M. Bechet, T. J. Begley, C. Behl, C. Behrends, S. Bekri, B. Bellaire, L. J. Bendall, L. Benetti, L. Berliocchi, H. Bernardi, F. Bernassola, S. Besteiro, I. Bhatia-Kissova, X. Bi, M. Biard-Piechaczyk, J. S. Blum, L. H. Boise, P. Bonaldo, D. L. Boone, B. C. Bornhauser, K. R. Bortoluci, I. Bossis, F. Bost, J. P. Bourquin, P. Boya, M. Boyer-Guittaut, P. V. Bozhkov, N. R. Brady, C. Brancolini, A. Brech, J. E. Brenman, A. Brennand, E. H. Bresnick, P. Brest, D. Bridges, M. L. Bristol, P. S. Brookes, E. J. Brown, J. H. Brumell, N. Brunetti-Pierri, U. T. Brunk, D. E. Bulman, S. J. Bultman, G. Bultynck, L. F. Burbulla, W. Bursch, J. P. Butchar, W. Buzgariu, S. P. Bydlowski, K. Cadwell, M. Cahova, D. Cai, J. Cai, Q. Cai, B. Calabretta, J. Calvo-Garrido, N. Camougrand, M. Campanella, J. Campos-Salinas, E. Candi, L. Cao, A. B. Caplan, S. R. Carding, S. M. Cardoso, J. S. Carew, C. R. Carlin, V. Carmignac, L. A. Carneiro, S. Carra, R. A. Caruso, G. Casari, C. Casas, R. Castino, E. Cebollero, F. Cecconi, J. Celli, H. Chaachouay, H. J. Chae, C. Y. Chai, D. C. Chan, E. Y. Chan, R. C. Chang, C. M. Che, C. C. Chen, G. C. Chen, G. Q. Chen, M. Chen, Q. Chen, S. S. Chen, W. Chen, X. Chen, Y. G. Chen, Y. Chen, Y. J. Chen, Z. Chen, A. Cheng, C. H. Cheng, Y. Cheng, H. Cheong, J. H. Cheong, S. Cherry, R. Chess-Williams, Z. H. Cheung, E. Chevet, H. L. Chiang, R. Chiarelli, T. Chiba, L. S. Chin, S. H. Chiou, F. V. Chisari, C. H. Cho, D. H. Cho, A. M. Choi, D. Choi, K. S. Choi, M. E. Choi, S. Chouaib, D. Choubey, V. Choubey, C. T. Chu, T. H. Chuang, S. H. Chueh, T. Chun, Y. J. Chwae, M. L. Chye, R. Ciarcia, M. R. Ciriolo, M. J. Clague, R. S. Clark, P. G. Clarke, R. Clarke, P. Codogno, H. A. Coller, M. I. Colombo, S. Comincini, M. Condello, F. Condorelli, M. R. Cookson, G. H. Coombs, I. Coppens, R. Corbalan, P. Cossart, P. Costelli, S. Costes, A. Coto-Montes, E. Couve, F. P. Coxon, J. M. Cregg, J. L. Crespo, M. J. Cronje, A. M. Cuervo, J. J. Cullen, M. J. Czaja, M. D’Amelio, A. Darfeuille-Michaud, L. M. Davids, F. E. Davies, M. De Felici, J. F. de Groot, C. A. de Haan, L. De Martino, A. De Milito, V. De Tata, J. Debnath, A. Degterev, B. Dehay, L. M. Delbridge, F. Demarchi, Y. Z. Deng, J. Dengjel, P. Dent, D. Denton, V. Deretic, S. D. Desai, R. J. Devenish, M. Di Gioacchino, G. Di Paolo, C. Di Pietro, G. Diaz-Araya, I. Diaz-Laviada, M. T. Diaz-Meco, J. Diaz-Nido, I. Dikic, S. P. Dinesh-Kumar, W. X. Ding, C. W. Distelhorst, A. Diwan, M. Djavaheri-Mergny, S. Dokudovskaya, Z. Dong, F. C. Dorsey, V. Dosenko, J. J. Dowling, S. Doxsey, M. Dreux, M. E. Drew, Q. Duan, M. A. Duchosal, K. Duff, I. Dugail, M. Durbeej, M. Duszenko, C. L. Edelstein, A. L. Edinger, G. Egea, L. Eichinger, N. T. Eissa, S. Ekmekcioglu, W. S. El-Deiry, Z. Elazar, M. Elgendy, L. M. Ellerby, K. E. Eng, A. M. Engelbrecht, S. Engelender, J. Erenpreisa, R. Escalante, A. Esclatine, E. L. Eskelinen, L. Espert, V. Espina, H. Fan, J. Fan, Q. W. Fan, Z. Fan, S. Fang, Y. Fang, M. Fanto, A. Fanzani, T. Farkas, J. C. Farre, M. Faure, M. Fechheimer, C. G. Feng, J. Feng, Q. Feng, Y. Feng, L. Fesus, R. Feuer, M. E. Figueiredo-Pereira, G. M. Fimia, D. C. Fingar, S. Finkbeiner, T. Finkel, K. D. Finley, F. Fiorito, E. A. Fisher, P. B. Fisher, M. Flajolet, M. L. Florez-McClure, S. Florio, E. A. Fon, F. Fornai, F. Fortunato, R. Fotedar, D. H. Fowler, H. S. Fox, R. Franco, L. B. Frankel, M. Fransen, J. M. Fuentes, J. Fueyo, J. Fujii, K. Fujisaki, E. Fujita, M. Fukuda, R. H. Furukawa, M. Gaestel, P. Gailly, M. Gajewska, B. Galliot, V. Galy, S. Ganesh, B. Ganetzky, I. G. Ganley, F. B. Gao, G. F. Gao, J. Gao, L. Garcia, G. Garcia-Manero, M. Garcia-Marcos, M. Garmyn, A. L. Gartel, E. Gatti, M. Gautel, T. R. Gawriluk, M. E. Gegg, J. Geng, M. Germain, J. E. Gestwicki, D. A. Gewirtz, S. Ghavami, P. Ghosh, A. M. Giammarioli, A. N. Giatromanolaki, S. B. Gibson, R. W. Gilkerson, M. L. Ginger, H. N. Ginsberg, J. Golab, M. S. Goligorsky, P. Golstein, C. Gomez-Manzano, E. Goncu, C. Gongora, C. D. Gonzalez, R. Gonzalez, C. Gonzalez-Estevez, R. A. Gonzalez-Polo, E. Gonzalez-Rey, N. V. Gorbunov, S. Gorski, S. Goruppi, R. A. Gottlieb, D. Gozuacik, G. E. Granato, G. D. Grant, K. N. Green, A. Gregorc, F. Gros, C. Grose, T. W. Grunt, P. Gual, J. L. Guan, K. L. Guan, S. M. Guichard, A. S. Gukovskaya, I. Gukovsky, J. Gunst, A. B. Gustafsson, A. J. Halayko, A. N. Hale, S. K. Halonen, M. Hamasaki, F. Han, T. Han, M. K. Hancock, M. Hansen, H. Harada, M. Harada, S. E. Hardt, J. W. Harper, A. L. Harris, J. Harris, S. D. Harris, M. Hashimoto, J. A. Haspel, S. Hayashi, L. A. Hazelhurst, C. He, Y. W. He, M. J. Hebert, K. A. Heidenreich, M. H. Helfrich, G. V. Helgason, E. P. Henske, B. Herman, P. K. Herman, C. Hetz, S. Hilfiker, J. A. Hill, L. J. Hocking, P. Hofman, T. G. Hofmann, J. Hohfeld, T. L. Holyoake, M. H. Hong, D. A. Hood, G. S. Hotamisligil, E. J. Houwerzijl, M. Hoyer-Hansen, B. Hu, C. A. Hu, H. M. Hu, Y. Hua, C. Huang, J. Huang, S. Huang, W. P. Huang, T. B. Huber, W. K. Huh, T. H. Hung, T. R. Hupp, G. M. Hur, J. B. Hurley, S. N. Hussain, P. J. Hussey, J. J. Hwang, S. Hwang, A. Ichihara, S. Ilkhanizadeh, K. Inoki, T. Into, V. Iovane, J. L. Iovanna, N. Y. Ip, Y. Isaka, H. Ishida, C. Isidoro, K. Isobe, A. Iwasaki, M. Izquierdo, Y. Izumi, P. M. Jaakkola, M. Jaattela, G. R. Jackson, W. T. Jackson, B. Janji, M. Jendrach, J. H. Jeon, E. B. Jeung, H. Jiang, J. X. Jiang, M. Jiang, Q. Jiang, X. Jiang, A. Jimenez, M. Jin, S. Jin, C. O. Joe, T. Johansen, D. E. Johnson, G. V. Johnson, N. L. Jones, B. Joseph, S. K. Joseph, A. M. Joubert, G. Juhasz, L. Juillerat-Jeanneret, C. H. Jung, Y. K. Jung, K. Kaarniranta, A. Kaasik, T. Kabuta, M. Kadowaki, K. Kagedal, Y. Kamada, V. O. Kaminskyy, H. H. Kampinga, H. Kanamori, C. Kang, K. B. Kang, K. I. Kang, R. Kang, Y. A. Kang, T. Kanki, T. D. Kanneganti, H. Kanno, A. G. Kanthasamy, A. Kanthasamy, V. Karantza, G. P. Kaushal, S. Kaushik, Y. Kawazoe, P. Y. Ke, J. H. Kehrl, A. Kelekar, C. Kerkhoff, D. H. Kessel, H. Khalil, J. A. Kiel, A. A. Kiger, A. Kihara, D. R. Kim, D. H. Kim, E. K. Kim, H. R. Kim, J. S. Kim, J. H. Kim, J. C. Kim, J. K. Kim, P. K. Kim, S. W. Kim, Y. S. Kim, Y. Kim, A. Kimchi, A. C. Kimmelman, J. S. King, T. J. Kinsella, V. Kirkin, L. A. Kirshenbaum, K. Kitamoto, K. Kitazato, L. Klein, W. T. Klimecki, J. Klucken, E. Knecht, B. C. Ko, J. C. Koch, H. Koga, J. Y. Koh, Y. H. Koh, M. Koike, M. Komatsu, E. Kominami, H. J. Kong, W. J. Kong, V. I. Korolchuk, Y. Kotake, M. I. Koukourakis, J. B. Kouri Flores, A. L. Kovacs, C. Kraft, D. Krainc, H. Kramer, C. Kretz-Remy, A. M. Krichevsky, G. Kroemer, R. Kruger, O. Krut, N. T. Ktistakis, C. Y. Kuan, R. Kucharczyk, A. Kumar, R. Kumar, S. Kumar, M. Kundu, H. J. Kung, T. Kurz, H. J. Kwon, A. R. La Spada, F. Lafont, T. Lamark, J. Landry, J. D. Lane, P. Lapaquette, J. F. Laporte, L. Laszlo, S. Lavandero, J. N. Lavoie, R. Layfield, P. A. Lazo, W. Le, L. Le Cam, D. J. Ledbetter, A. J. Lee, B. W. Lee, G. M. Lee, J. Lee, J. H. Lee, M. Lee, M. S. Lee, S. H. Lee, C. Leeuwenburgh, P. Legembre, R. Legouis, M. Lehmann, H. Y. Lei, Q. Y. Lei, D. A. Leib, J. Leiro, J. J. Lemasters, A. Lemoine, M. S. Lesniak, D. Lev, V. V. Levenson, B. Levine, E. Levy, F. Li, J. L. Li, L. Li, S. Li, W. Li, X. J. Li, Y. B. Li, Y. P. Li, C. Liang, Q. Liang, Y. F. Liao, P. P. Liberski, A. Lieberman, H. J. Lim, K. L. Lim, K. Lim, C. F. Lin, F. C. Lin, J. Lin, J. D. Lin, K. Lin, W. W. Lin, W. C. Lin, Y. L. Lin, R. Linden, P. Lingor, J. Lippincott-Schwartz, M. P. Lisanti, P. B. Liton, B. Liu, C. F. Liu, K. Liu, L. Liu, Q. A. Liu, W. Liu, Y. C. Liu, Y. Liu, R. A. Lockshin, C. N. Lok, S. Lonial, B. Loos, G. Lopez-Berestein, C. Lopez-Otin, L. Lossi, M. T. Lotze, P. Low, B. Lu, Z. Lu, F. Luciano, N. W. Lukacs, A. H. Lund, M. A. Lynch-Day, Y. Ma, F. Macian, J. P. MacKeigan, K. F. Macleod, F. Madeo, L. Maiuri, M. C. Maiuri, D. Malagoli, M. C. Malicdan, W. Malorni, N. Man, E. M. Mandelkow, S. Manon, I. Manov, K. Mao, X. Mao, Z. Mao, P. Marambaud, D. Marazziti, Y. L. Marcel, K. Marchbank, P. Marchetti, S. J. Marciniak, M. Marcondes, M. Mardi, G. Marfe, G. Marino, M. Markaki, M. R. Marten, S. J. Martin, C. Martinand-Mari, W. Martinet, M. Martinez-Vicente, M. Masini, P. Matarrese, S. Matsuo, R. Matteoni, A. Mayer, N. M. Mazure, D. J. McConkey, M. J. McConnell, C. McDermott, C. McDonald, G. M. McInerney, S. L. McKenna, B. McLaughlin, P. J. McLean, C. R. McMaster, G. A. McQuibban, A. J. Meijer, M. H. Meisler, A. Melendez, T. J. Melia, G. Melino, M. A. Mena, J. A. Menendez, R. F. Menna-Barreto, M. B. Menon, F. M. Menzies, C. A. Mercer, A. Merighi, D. E. Merry, S. Meschini, C. G. Meyer, T. F. Meyer, C. Y. Miao, J. Y. Miao, P. A. Michels, C. Michiels, D. Mijaljica, A. Milojkovic, S. Minucci, C. Miracco, C. K. Miranti, I. Mitroulis, K. Miyazawa, N. Mizushima, B. Mograbi, S. Mohseni, X. Molero, B. Mollereau, F. Mollinedo, T. Momoi, I. Monastyrska, M. M. Monick, M. J. Monteiro, M. N. Moore, R. Mora, K. Moreau, P. I. Moreira, Y. Moriyasu, J. Moscat, S. Mostowy, J. C. Mottram, T. Motyl, C. E. Moussa, S. Muller, K. Munger, C. Munz, L. O. Murphy, M. E. Murphy, A. Musaro, I. Mysorekar, E. Nagata, K. Nagata, A. Nahimana, U. Nair, T. Nakagawa, K. Nakahira, H. Nakano, H. Nakatogawa, M. Nanjundan, N. I. Naqvi, D. P. Narendra, M. Narita, M. Navarro, S. T. Nawrocki, T. Y. Nazarko, A. Nemchenko, M. G. Netea, T. P. Neufeld, P. A. Ney, I. P. Nezis, H. P. Nguyen, D. Nie, I. Nishino, C. Nislow, R. A. Nixon, T. Noda, A. A. Noegel, A. Nogalska, S. Noguchi, L. Notterpek, I. Novak, T. Nozaki, N. Nukina, T. Nurnberger, B. Nyfeler, K. Obara, T. D. Oberley, S. Oddo, M. Ogawa, T. Ohashi, K. Okamoto, N. L. Oleinick, F. J. Oliver, L. J. Olsen, S. Olsson, O. Opota, T. F. Osborne, G. K. Ostrander, K. Otsu, J. H. Ou, M. Ouimet, M. Overholtzer, B. Ozpolat, P. Paganetti, U. Pagnini, N. Pallet, G. E. Palmer, C. Palumbo, T. Pan, T. Panaretakis, U. B. Pandey, Z. Papackova, I. Papassideri, I. Paris, J. Park, O. K. Park, J. B. Parys, K. R. Parzych, S. Patschan, C. Patterson, S. Pattingre, J. M. Pawelek, J. Peng, D. H. Perlmutter, I. Perrotta, G. Perry, S. Pervaiz, M. Peter, G. J. Peters, M. Petersen, G. Petrovski, J. M. Phang, M. Piacentini, P. Pierre, V. Pierrefite-Carle, G. Pierron, R. Pinkas-Kramarski, A. Piras, N. Piri, L. C. Platanias, S. Poggeler, M. Poirot, A. Poletti, C. Pous, M. Pozuelo-Rubio, M. Praetorius-Ibba, A. Prasad, M. Prescott, M. Priault, N. Produit-Zengaffinen, A. Progulske-Fox, T. Proikas-Cezanne, S. Przedborski, K. Przyklenk, R. Puertollano, J. Puyal, S. B. Qian, L. Qin, Z. H. Qin, S. E. Quaggin, N. Raben, H. Rabinowich, S. W. Rabkin, I. Rahman, A. Rami, G. Ramm, G. Randall, F. Randow, V. A. Rao, J. C. Rathmell, B. Ravikumar, S. K. Ray, B. H. Reed, J. C. Reed, F. Reggiori, A. Regnier-Vigouroux, A. S. Reichert, J. J. Reiners Jr., R. J. Reiter, J. Ren, J. L. Revuelta, C. J. Rhodes, K. Ritis, E. Rizzo, J. Robbins, M. Roberge, H. Roca, M. C. Roccheri, S. Rocchi, H. P. Rodemann, S. Rodriguez de Cordoba, B. Rohrer, I. B. Roninson, K. Rosen, M. M. Rost-Roszkowska, M. Rouis, K. M. Rouschop, F. Rovetta, B. P. Rubin, D. C. Rubinsztein, K. Ruckdeschel, E. B. Rucker 3rd, A. Rudich, E. Rudolf, N. Ruiz-Opazo, R. Russo, T. E. Rusten, K. M. Ryan, S. W. Ryter, D. M. Sabatini, J. Sadoshima, T. Saha, T. Saitoh, H. Sakagami, Y. Sakai, G. H. Salekdeh, P. Salomoni, P. M. Salvaterra, G. Salvesen, R. Salvioli, A. M. Sanchez, J. A. Sanchez-Alcazar, R. Sanchez-Prieto, M. Sandri, U. Sankar, P. Sansanwal, L. Santambrogio, S. Saran, S. Sarkar, M. Sarwal, C. Sasakawa, A. Sasnauskiene, M. Sass, K. Sato, M. Sato, A. H. Schapira, M. Scharl, H. M. Schatzl, W. Scheper, S. Schiaffino, C. Schneider, M. E. Schneider, R. Schneider-Stock, P. V. Schoenlein, D. F. Schorderet, C. Schuller, G. K. Schwartz, L. Scorrano, L. Sealy, P. O. Seglen, J. Segura-Aguilar, I. Seiliez, O. Seleverstov, C. Sell, J. B. Seo, D. Separovic, V. Setaluri, T. Setoguchi, C. Settembre, J. J. Shacka, M. Shanmugam, I. M. Shapiro, E. Shaulian, R. J. Shaw, J. H. Shelhamer, H. M. Shen, W. C. Shen, Z. H. Sheng, Y. Shi, K. Shibuya, Y. Shidoji, J. J. Shieh, C. M. Shih, Y. Shimada, S. Shimizu, T. Shintani, O. S. Shirihai, G. C. Shore, A. A. Sibirny, S. B. Sidhu, B. Sikorska, E. C. Silva-Zacarin, A. Simmons, A. K. Simon, H. U. Simon, C. Simone, A. Simonsen, D. A. Sinclair, R. Singh, D. Sinha, F. A. Sinicrope, A. Sirko, P. M. Siu, E. Sivridis, V. Skop, V. P. Skulachev, R. S. Slack, S. S. Smaili, D. R. Smith, M. S. Soengas, T. Soldati, X. Song, A. K. Sood, T. W. Soong, F. Sotgia, S. A. Spector, C. D. Spies, W. Springer, S. M. Srinivasula, L. Stefanis, J. S. Steffan, R. Stendel, H. Stenmark, A. Stephanou, S. T. Stern, C. Sternberg, B. Stork, P. Stralfors, C. S. Subauste, X. Sui, D. Sulzer, J. Sun, S. Y. Sun, Z. J. Sun, J. J. Sung, K. Suzuki, T. Suzuki, M. S. Swanson, C. Swanton, S. T. Sweeney, L. K. Sy, G. Szabadkai, I. Tabas, H. Taegtmeyer, M. Tafani, K. Takacs-Vellai, Y. Takano, K. Takegawa, G. Takemura, F. Takeshita, N. J. Talbot, K. S. Tan, K. Tanaka, D. Tang, I. Tanida, B. A. Tannous, N. Tavernarakis, G. S. Taylor, G. A. Taylor, J. P. Taylor, L. S. Terada, A. Terman, G. Tettamanti, K. Thevissen, C. B. Thompson, A. Thorburn, M. Thumm, F. Tian, Y. Tian, G. Tocchini-Valentini, A. M. Tolkovsky, Y. Tomino, L. Tonges, S. A. Tooze, C. Tournier, J. Tower, R. Towns, V. Trajkovic, L. H. Travassos, T. F. Tsai, M. P. Tschan, T. Tsubata, A. Tsung, B. Turk, L. S. Turner, S. C. Tyagi, Y. Uchiyama, T. Ueno, M. Umekawa, R. Umemiya-Shirafuji, V. K. Unni, M. I. Vaccaro, E. M. Valente, G. Van den Berghe, I. J. van der Klei, W. van Doorn, L. F. van Dyk, M. van Egmond, L. A. van Grunsven, P. Vandenabeele, W. P. Vandenberghe, I. Vanhorebeek, E. C. Vaquero, G. Velasco, T. Vellai, J. M. Vicencio, R. D. Vierstra, M. Vila, C. Vindis, G. Viola, M. T. Viscomi, O. V. Voitsekhovskaja, C. von Haefen, M. Votruba, K. Wada, R. Wade-Martins, C. L. Walker, C. M. Walsh, J. Walter, X. B. Wan, A. Wang, C. Wang, D. Wang, F. Wang, G. Wang, H. Wang, H. G. Wang, H. D. Wang, J. Wang, K. Wang, M. Wang, R. C. Wang, X. Wang, Y. J. Wang, Y. Wang, Z. Wang, Z. C. Wang, D. G. Wansink, D. M. Ward, H. Watada, S. L. Waters, P. Webster, L. Wei, C. C. Weihl, W. A. Weiss, S. M. Welford, L. P. Wen, C. A. Whitehouse, J. L. Whitton, A. J. Whitworth, T. Wileman, J. W. Wiley, S. Wilkinson, D. Willbold, R. L. Williams, P. R. Williamson, B. G. Wouters, C. Wu, D. C. Wu, W. K. Wu, A. Wyttenbach, R. J. Xavier, Z. Xi, P. Xia, G. Xiao, Z. Xie, D. Z. Xu, J. Xu, L. Xu, X. Xu, A. Yamamoto, S. Yamashina, M. Yamashita, X. Yan, M. Yanagida, D. S. Yang, E. Yang, J. M. Yang, S. Y. Yang, W. Yang, W. Y. Yang, Z. Yang, M. C. Yao, T. P. Yao, B. Yeganeh, W. L. Yen, J. J. Yin, X. M. Yin, O. J. Yoo, G. Yoon, S. Y. Yoon, T. Yorimitsu, Y. Yoshikawa, T. Yoshimori, K. Yoshimoto, H. J. You, R. J. Youle, A. Younes, L. Yu, S. W. Yu, W. H. Yu, Z. M. Yuan, Z. Yue, C. H. Yun, M. Yuzaki, O. Zabirnyk, E. Silva-Zacarin, D. Zacks, E. Zacksenhaus, N. Zaffaroni, Z. Zakeri, H. J. Zeh 3rd, S. O. Zeitlin, H. Zhang, H. L. Zhang, J. Zhang, J. P. Zhang, L. Zhang, M. Y. Zhang, X. D. Zhang, M. Zhao, Y. F. Zhao, Y. Zhao, Z. J. Zhao, X. Zheng, B. Zhivotovsky, Q. Zhong, C. Z. Zhou, C. Zhu, W. G. Zhu, X. F. Zhu, X. Zhu, Y. Zhu, T. Zoladek, W. X. Zong, A. Zorzano, J. Zschocke, B. Zuckerbraun, Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy, Autophagy, 2012, 8, 445–544.
H. Maes, S. Van Eygen, D. V. Krysko, P. Vandenabeele, K. Nys, K. Rillaerts, A. D. Garg, T. Verfaillie, P. Agostinis, BNIP3 supports melanoma cell migration and vasculogenic mimicry by orchestrating the actin cytoskeleton, Cell Death Dis., 2014, 5, e1127.
A. D. Garg, A. M. Dudek, P. Agostinis, Cancer immunogenicity, danger signals, and DAMPs: what, when, and how?, BioFactors, 2013, 39, 355–367.
N. Mizushima, M. Komatsu, Autophagy: renovation of cells and tissues, Cell, 2011, 147, 728–741.
B. Levine, G. Kroemer, Autophagy in the pathogenesis of disease, Cell, 2008, 132, 27–42.
A. D. Garg, P. Agostinis, ER stress, autophagy and immunogenic cell death in photodynamic therapy-induced anti-cancer immune responses, Photochem. Photobiol. Sci., 2014, 13, 474–487.
Q. Lu, F. Wu, H. Zhang, Aggrephagy: lessons from C. elegans, Biochem. J., 2013, 452, 381–390.
Y. Chen, D. J. Klionsky, The regulation of autophagy–unanswered questions, J. Cell Sci., 2011, 124, 161–170.
W. W. Li, J. Li, J. K. Bao, Microautophagy: lesser-known self-eating, Cell. Mol. Life Sci., 2012, 69, 1125–1136.
A. C. Massey, S. Kaushik, G. Sovak, R. Kiffin, A. M. Cuervo, Consequences of the selective blockage of chaperone-mediated autophagy, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 2006, 103, 5805–5810.
N. Chen, V. Karantza, Autophagy as a therapeutic target in cancer, Cancer Biol. Ther., 2011, 11, 157–168.
E. Y. Liu, K. M. Ryan, Autophagy and cancer–issues we need to digest, J. Cell Sci., 2012, 125, 2349–2358.
R. K. Amaravadi, J. Lippincott-Schwartz, X. M. Yin, W. A. Weiss, N. Takebe, W. Timmer, R. S. DiPaola, M. T. Lotze, E. White, Principles and current strategies for targeting autophagy for cancer treatment, Clin. Cancer Res., 2011, 17, 654–666.
E. White, Deconvoluting the context-dependent role for autophagy in cancer, Nat. Rev. Cancer, 2012, 12, 401–410.
P. Agostinis, K. Berg, K. A. Cengel, T. H. Foster, A. W. Girotti, S. O. Gollnick, S. M. Hahn, M. R. Hamblin, A. Juzeniene, D. Kessel, M. Korbelik, J. Moan, P. Mroz, D. Nowis, J. Piette, B. C. Wilson, J. Golab, Photodynamic therapy of cancer: An update, CA-Cancer J. Clin., 2011, 61, 250–281.
T. Verfaillie, A. van Vliet, A. D. Garg, M. Dewaele, N. Rubio, S. Gupta, P. de Witte, A. Samali, P. Agostinis, Pro-apoptotic signaling induced by photo-oxidative ER stress is amplified by Noxa, not Bim, Biochem. Biophys. Res. Commun., 2013, 438, 500–506.
A. D. Garg, M. Bose, M. I. Ahmed, W. A. Bonass, S. R. Wood, In vitro studies on erythrosine-based photodynamic therapy of malignant and pre-malignant oral epithelial cells, PLoS One, 2012, 7, e34475.
R. Baskar, K. A. Lee, R. Yeo, K. W. Yeoh, Cancer and radiation therapy: current advances and future directions, Int. J. Med. Sci., 2012, 9, 193–199.
I. Adkins, J. Fucikova, A. D. Garg, P. Agostinis, R. Spisek, Physical modalities inducing immunogenic tumor cell death for cancer immunotherapy, Oncoimmunology, 2014, 3, e968434.
T. Verfaillie, N. Rubio, A. D. Garg, G. Bultynck, R. Rizzuto, J. P. Decuypere, J. Piette, C. Linehan, S. Gupta, A. Samali, P. Agostinis, PERK is required at the ER-mitochondrial contact sites to convey apoptosis after ROS-based ER stress, Cell Death Differ., 2012, 19, 1880–1891.
B. Levine, N. Mizushima, H. W. Virgin, Autophagy in immunity and inflammation, Nature, 2011, 469, 323–335.
X. Qu, J. Yu, G. Bhagat, N. Furuya, H. Hibshoosh, A. Troxel, J. Rosen, E. L. Eskelinen, N. Mizushima, Y. Ohsumi, G. Cattoretti, B. Levine, Promotion of tumorigenesis by heterozygous disruption of the beclin 1 autophagy gene, J. Clin. Invest., 2003, 112, 1809–1820.
C. Liang, P. Feng, B. Ku, I. Dotan, D. Canaani, B. H. Oh, J. U. Jung, Autophagic and tumour suppressor activity of a novel Beclin1-binding protein UVRAG, Nat. Cell Biol., 2006, 8, 688–699.
Y. Takahashi, D. Coppola, N. Matsushita, H. D. Cualing, M. Sun, Y. Sato, C. Liang, J. U. Jung, J. Q. Cheng, J. J. Mule, W. J. Pledger, H. G. Wang, Bif-1 interacts with Beclin 1 through UVRAG and regulates autophagy and tumorigenesis, Nat. Cell Biol., 2007, 9, 1142–1151.
V. Karantza-Wadsworth, S. Patel, O. Kravchuk, G. Chen, R. Mathew, S. Jin, E. White, Autophagy mitigates metabolic stress and genome damage in mammary tumorigenesis, Genes Dev., 2007, 21, 1621–1635.
A. R. Young, M. Narita, M. Ferreira, K. Kirschner, M. Sadaie, J. F. Darot, S. Tavare, S. Arakawa, S. Shimizu, F. M. Watt, Autophagy mediates the mitotic senescence transition, Genes Dev., 2009, 23, 798–803.
D. Grasso, M. I. Vaccaro, Macroautophagy and the oncogene-induced senescence, Front. Endocrinol., 2014, 5, 157.
S. V. Laddha, S. Ganesan, C. S. Chan, E. White, Mutational landscape of the essential autophagy gene BECN1 in human cancers, Mol. Cancer Res., 2014, 12, 485–490.
A. Takamura, M. Komatsu, T. Hara, A. Sakamoto, C. Kishi, S. Waguri, Y. Eishi, O. Hino, K. Tanaka, N. Mizushima, Autophagy-deficient mice develop multiple liver tumors, Genes Dev., 2011, 25, 795–800.
M. Kon, R. Kiffin, H. Koga, J. Chapochnick, F. Macian, L. Varticovski, A. M. Cuervo, Chaperone-mediated autophagy is required for tumor growth, Sci. Transl. Med., 2011, 3, 109ra117.
J. J. Lum, D. E. Bauer, M. Kong, M. H. Harris, C. Li, T. Lindsten, C. B. Thompson, Growth factor regulation of autophagy and cell survival in the absence of apoptosis, Cell, 2005, 120, 237–248.
C. Fung, R. Lock, S. Gao, E. Salas, J. Debnath, Induction of autophagy during extracellular matrix detachment promotes cell survival, Mol. Biol. Cell, 2008, 19, 797–806.
Y. Chen, E. McMillan-Ward, J. Kong, S. J. Israels, S. B. Gibson, Oxidative stress induces autophagic cell death independent of apoptosis in transformed and cancer cells, Cell Death Differ., 2008, 15, 171–182.
H. T. Ji, L. T. Chien, Y. H. Lin, H. F. Chien, C. T. Chen, 5-ALA mediated photodynamic therapy induces autophagic cell death via AMP-activated protein kinase, Mol. Cancer, 2010, 9, 91.
S. Shimizu, A. Konishi, Y. Nishida, T. Mizuta, H. Nishina, A. Yamamoto, Y. Tsujimoto, Involvement of JNK in the regulation of autophagic cell death, Oncogene, 2010, 29, 2070–2082.
M. Dewaele, W. Martinet, N. Rubio, T. Verfaillie, P. A. de Witte, J. Piette, P. Agostinis, Autophagy pathways activated in response to PDT contribute to cell resistance against ROS damage, J. Cell Mol. Med., 2011, 15, 1402–1414.
R. Lock, C. M. Kenific, A. M. Leidal, E. Salas, J. Debnath, Autophagy-dependent production of secreted factors facilitates oncogenic RAS-driven invasion, Cancer Discovery, 2014, 4, 466–479.
H. Maes, A. Kuchnio, A. Peric, S. Moens, K. Nys, K. De Bock, A. Quaegebeur, S. Schoors, M. Georgiadou, J. Wouters, S. Vinckier, H. Vankelecom, M. Garmyn, A. C. Vion, F. Radtke, C. Boulanger, H. Gerhardt, E. Dejana, M. Dewerchin, B. Ghesquiere, W. Annaert, P. Agostinis, P. Carmeliet, Tumor vessel normalization by chloroquine independent of autophagy, Cancer Cell, 2014, 26, 190–206.
P. Kuballa, W. M. Nolte, A. B. Castoreno, R. J. Xavier, Autophagy and the immune system, Annu. Rev. Immunol., 2012, 30, 611–646.
A. D. Garg, A. M. Dudek, G. B. Ferreira, T. Verfaillie, P. Vandenabeele, D. V. Krysko, C. Mathieu, P. Agostinis, ROS-induced autophagy in cancer cells assists in evasion from determinants of immunogenic cell death, Autophagy, 2013, 9, 1292–1307.
L. Zitvogel, O. Kepp, G. Kroemer, Decoding cell death signals in inflammation and immunity, Cell, 2010, 140, 798–804.
C. Capparelli, C. Guido, D. Whitaker-Menezes, G. Bonuccelli, R. Balliet, T. G. Pestell, A. F. Goldberg, R. G. Pestell, A. Howell, S. Sneddon, R. Birbe, A. Tsirigos, U. Martinez-Outschoorn, F. Sotgia, M. P. Lisanti, Autophagy and senescence in cancer-associated fibroblasts metabolically supports tumor growth and metastasis via glycolysis and ketone production, Cell Cycle, 2012, 11, 2285–2302.
D. C. Rubinsztein, P. Codogno, B. Levine, Autophagy modulation as a potential therapeutic target for diverse diseases, Nat. Rev. Drug Discovery, 2012, 11, 709–730.
J. M. Levy, A. Thorburn, Targeting autophagy during cancer therapy to improve clinical outcomes, Pharmacol. Ther., 2011, 131, 130–141.
O. Kepp, L. Senovilla, I. Vitale, E. Vacchelli, S. Adjemian, P. Agostinis, L. Apetoh, F. Aranda, V. Barnaba, N. Bloy, L. Bracci, K. Breckpot, D. Brough, A. Buqué, M. G. Castro, M. Cirone, M. I. Colombo, I. Cremer, S. Demaria, L. Dini, A. G. Eliopoulos, A. Faggioni, S. C. Formenti, J. Fucikova, L. Gabriele, U. S. Gaipl, J. r. m. Galon, A. Garg, F. o. Ghiringhelli, N. A. Giese, Z. S. Guo, A. Hemminki, M. Herrmann, J. W. Hodge, S. Holdenrieder, J. Honeychurch, H.-M. Hu, X. Huang, T. M. Illidge, K. Kono, M. Korbelik, D. V. Krysko, S. Loi, P. R. Lowenstein, E. Lugli, Y. Ma, F. Madeo, A. A. Manfredi, I. Martins, D. Mavilio, L. Menger, N. Merendino, M. Michaud, G. Mignot, K. L. Mossman, G. Multhoff, R. Oehler, F. Palombo, T. Panaretakis, J. Pol, E. Proietti, J.-E. Ricci, C. Riganti, P. Rovere-Querini, A. Rubartelli, A. Sistigu, M. J. Smyth, J. Sonnemann, R. Spisek, J. Stagg, A. Q. Sukkurwala, E. Tartour, A. Thorburn, S. H. Thorne, P. Vandenabeele, F. Velotti, S. T. Workenhe, H. Yang, W.-X. Zong, L. Zitvogel, G. Kroemer, L. Galluzzi, Consensus guidelines for the detection of immunogenic cell death, Oncoimmunology, 2014, 3, e955691.
A. D. Garg, A. M. Dudek, P. Agostinis, Calreticulin surface exposure is abrogated in cells lacking, chaperone-mediated autophagy-essential gene, LAMP2A, Cell Death Dis., 2013, 4, e826.
M. Michaud, I. Martins, A. Q. Sukkurwala, S. Adjemian, Y. Ma, P. Pellegatti, S. Shen, O. Kepp, M. Scoazec, G. Mignot, S. Rello-Varona, M. Tailler, L. Menger, E. Vacchelli, L. Galluzzi, F. Ghiringhelli, F. di Virgilio, L. Zitvogel, G. Kroemer, Autophagy-dependent anticancer immune responses induced by chemotherapeutic agents in mice, Science, 2011, 334, 1573–1577.
J. J. Reiners Jr., P. Agostinis, K. Berg, N. L. Oleinick, D. Kessel, Assessing autophagy in the context of photodynamic therapy, Autophagy, 2010, 6, 7–18.
D. H. Kessel, M. Price, J. J. Reiners Jr., ATG7 deficiency suppresses apoptosis and cell death induced by lysosomal photodamage, Autophagy, 2012, 8, 1333–1341.
B. Fateye, W. Li, C. Wang, B. Chen, Combination of phosphatidylinositol 3-kinases pathway inhibitor and photodynamic therapy in endothelial and tumor cells, Photochem. Photobiol., 2012, 88, 1265–1272.
M. Andrzejak, M. Price, D. H. Kessel, Apoptotic and autophagic responses to photodynamic therapy in 1c1c7 murine hepatoma cells, Autophagy, 2011, 7, 979–984.
M. F. Wei, M. W. Chen, K. C. Chen, P. J. Lou, S. Y. Lin, S. C. Hung, M. Hsiao, C. J. Yao, M. J. Shieh, Autophagy promotes resistance to photodynamic therapy-induced apoptosis selectively in colorectal cancer stem-like cells, Autophagy, 2014, 10, 1179–1192.
L. Du, N. Jiang, G. Wang, Y. Chu, W. Lin, J. Qian, Y. Zhang, J. Zheng, G. Chen, Autophagy inhibition sensitizes bladder cancer cells to the photodynamic effects of the novel photosensitizer chlorophyllin e4, J. Photochem. Photobiol., B, 2014, 133C, 1–10.
D. Lihuan, Z. Jingcun, J. Ning, W. Guozeng, C. Yiwei, L. Wei, Q. Jing, Z. Yuanfang and C. Gang, Photodynamic therapy with the novel photosensitizer chlorophyllin f induces apoptosis and autophagy in human bladder cancer cells, Lasers Surg. Med., 2014, 46, 319–334.
M. Dewaele, W. Martinet, N. Rubio, T. Verfaillie, P. A. de Witte, J. Piette, P. Agostinis, Autophagy pathways activated in response to PDT contribute to cell resistance against ROS damage, J. Cell Mol. Med., 2010, 15, 1402–1414.
S. Yousefi, R. Perozzo, I. Schmid, A. Ziemiecki, T. Schaffner, L. Scapozza, T. Brunner, H. U. Simon, Calpain-mediated cleavage of Atg5 switches autophagy to apoptosis, Nat. Cell Biol., 2006, 8, 1124–1132.
N. Rubio, I. Coupienne, E. Di Valentin, I. Heirman, J. Grooten, J. Piette, P. Agostinis, Spatiotemporal autophagic degradation of oxidatively damaged organelles after photodynamic stress is amplified by mitochondrial reactive oxygen species, Autophagy, 2012, 8, 1312–1324.
N. Rubio, J. Verrax, M. Dewaele, T. Verfaillie, T. Johansen, J. Piette, P. Agostinis, p38(MAPK)-regulated induction of p62 and NBR1 after photodynamic therapy promotes autophagic clearance of ubiquitin aggregates and reduces reactive oxygen species levels by supporting Nrf2-antioxidant signaling, Free Radicals Biol. Med., 2014, 67, 292–303.
T. Kawaguchi, K. Miyazawa, S. Moriya, T. Ohtomo, X. F. Che, M. Naito, M. Itoh, A. Tomoda, Combined treatment with bortezomib plus bafilomycin A1 enhances the cytocidal effect and induces endoplasmic reticulum stress in U266 myeloma cells: crosstalk among proteasome, autophagy-lysosome and ER stress, Int. J. Oncol., 2011, 38, 643–654.
T. Kanzawa, I. M. Germano, T. Komata, H. Ito, Y. Kondo, S. Kondo, Role of autophagy in temozolomide-induced cytotoxicity for malignant glioma cells, Cell Death Differ., 2004, 11, 448–457.
T. Shingu, K. Fujiwara, O. Bogler, Y. Akiyama, K. Moritake, N. Shinojima, Y. Tamada, T. Yokoyama, S. Kondo, Inhibition of autophagy at a late stage enhances imatinib-induced cytotoxicity in human malignant glioma cells, Int. J. Cancer, 2009, 124, 1060–1071.
C. Gordy, Y. W. He, The crosstalk between autophagy and apoptosis: where does this lead?, Protein Cell, 2012, 3, 17–27.
I. Coupienne, S. Bontems, M. Dewaele, N. Rubio, Y. Habraken, S. Fulda, P. Agostinis, J. Piette, NF-kappaB inhibition improves the sensitivity of human glioblastoma cells to 5-aminolevulinic acid–based photodynamic therapy, Biochem. Pharmacol., 2010, 81, 606–616.
H. Jiang, E. J. White, C. Conrad, C. Gomez-Manzano, J. Fueyo, Autophagy pathways in glioblastoma, Methods Enzymol., 2009, 453, 273–286.
J. Yuan, G. Kroemer, Alternative cell death mechanisms in development and beyond, Genes Dev., 2010, 24, 2592–2602.
M. E. Bulina, D. M. Chudakov, O. V. Britanova, Y. G. Yanushevich, D. B. Staroverov, T. V. Chepurnykh, E. M. Merzlyak, M. A. Shkrob, S. Lukyanov, K. A. Lukyanov, A genetically encoded photosensitizer, Nat. Biotechnol., 2006, 24, 95–99.
L. Galluzzi, E. Vacchelli, J. Bravo-San Pedro, A. Buque, L. Senovilla, E. E. Baracco, N. Bloy, F. Castoldi, J. Abastado, P. Agostinis, R. N. Apte, F. Aranda, M. Ayyoub, P. Beckhove, J. Blay, L. Bracci, A. Caignard, C. Castelli, F. Cavallo, E. Celis, V. Cerundolo, A. Clayton, M. P. Colombo, L. Coussens, M. V. Dhodapkar, A. M. Eggermont, D. T. Fearon, W. H. Fridman, J. Fucikova, D. I. Gabrilovich, J. Galon, A. Garg, F. Ghiringhelli, G. Giaccone, E. Gilboa, S. Gnjatic, A. Hoos, A. Hosmalin, D. Jager, P. Kalinski, K. Karre, O. Kepp, R. Kiessling, J. M. Kirkwood, E. Klein, A. Knuth, C. E. Lewis, R. Liblau, M. T. Lotze, E. Lugli, J. Mach, F. Mattei, D. Mavilio, I. Melero, C. J. Melief, E. A. Mittendorf, L. Moretta, A. Odunsi, H. Okada, A. K. Palucka, M. E. Peter, K. J. Pienta, A. Porgador, G. C. Prendergast, G. A. Rabinovich, N. P. Restifo, N. Rizvi, C. Sautes-Fridman, H. Schreiber, B. Seliger, H. Shiku, B. Silva-Santos, M. J. Smyth, D. E. Speiser, R. Spisek, P. K. Srivastava, J. E. Talmadge, E. Tartour, S. H. Van Der Burg, B. J. Van Den Eynde, R. Vile, H. Wagner, J. S. Weber, T. L. Whiteside, J. D. Wolchok, L. Zitvogel, W. Zou, G. Kroemer, Classification of current anticancer immunotherapies, Oncotarget, 2014, 5, 12472–12508.
A. D. Garg, D. V. Krysko, T. Verfaillie, A. Kaczmarek, G. B. Ferreira, T. Marysael, N. Rubio, M. Firczuk, C. Mathieu, A. J. Roebroek, W. Annaert, J. Golab, P. de Witte, P. Vandenabeele, P. Agostinis, A novel pathway combining calreticulin exposure and ATP secretion in immunogenic cancer cell death, EMBO J., 2012, 31, 1062–1079.
O. Kepp, A. Tesniere, L. Zitvogel, G. Kroemer, The immunogenicity of tumor cell death, Curr. Opin. Oncol., 2009, 21, 71–76.
G. Canti, D. Lattuada, A. Nicolin, P. Taroni, G. Valentini, R. Cubeddu, Antitumor immunity induced by photodynamic therapy with aluminum disulfonated phthalocyanines and laser light, Anticancer Drugs, 1994, 5, 443–447.
M. Korbelik, B. Stott, J. Sun, Photodynamic therapy-generated vaccines: relevance of tumour cell death expression, Br. J. Cancer, 2007, 97, 1381–1387.
M. Korbelik, W. Zhang, S. Merchant, Involvement of damage-associated molecular patterns in tumor response to photodynamic therapy: surface expression of calreticulin and high-mobility group box-1 release, Cancer Immunol. Immunother., 2011, 60, 1431–1437.
P. S. Thong, K. W. Ong, N. S. Goh, K. W. Kho, V. Manivasager, R. Bhuvaneswari, M. Olivo, K. C. Soo, Photodynamic-therapy-activated immune response against distant untreated tumours in recurrent angiosarcoma, Lancet Oncol., 2007, 8, 950–952.
A. Oseroff, PDT as a cytotoxic agent and biological response modifier: Implications for cancer prevention and treatment in immunosuppressed and immunocompetent patients, J. Invest. Dermatol., 2006, 126, 542–544.
M. Korbelik, J. Sun, I. Cecic, Photodynamic therapy-induced cell surface expression and release of heat shock proteins: relevance for tumor response, Cancer Res., 2005, 65, 1018–1026.
A. D. Garg, D. V. Krysko, P. Vandenabeele, P. Agostinis, Hypericin-based photodynamic therapy induces surface exposure of damage-associated molecular patterns like HSP70 and calreticulin, Cancer Immunol. Immunother., 2012, 61, 215–221.
M. Korbelik, J. Banath, J. Sun, D. Canals, Y. A. Hannun, D. Separovic, Ceramide and sphingosine-1-phosphate act as photodynamic therapy-elicited damage-associated molecular patterns: cell surface exposure, Int. Immunopharmacol., 2014, 20, 359–365.
E. Panzarini, V. Inguscio, G. M. Fimia, L. Dini, Rose Bengal acetate photodynamic therapy (RBAc-PDT) induces exposure and release of Damage-Associated Molecular Patterns (DAMPs) in human HeLa cells, PLoS One, 2014, 9, e105778.
A. D. Garg, A. M. Dudek, P. Agostinis, Autophagy-dependent suppression of cancer immunogenicity and effector mechanisms of innate and adaptive immunity, Oncoimmunology, 2013, 2, e26260.
D. Kessel, J. J. Reiners Jr., Apoptosis and autophagy after mitochondrial or endoplasmic reticulum photodamage, Photochem. Photobiol., 2007, 83, 1024–1028.
Z. M. Markovic, B. Z. Ristic, K. M. Arsikin, D. G. Klisic, L. M. Harhaji-Trajkovic, B. M. Todorovic-Markovic, D. P. Kepic, T. K. Kravic-Stevovic, S. P. Jovanovic, M. M. Milenkovic, D. D. Milivojevic, V. Z. Bumbasirevic, M. D. Dramicanin, V. S. Trajkovic, Graphene quantum dots as autophagy-inducing photodynamic agents, Biomaterials, 2012, 33, 7084–7092.
J. Kim, W. Lim, S. Kim, S. Jeon, Z. Hui, K. Ni, C. Kim, Y. Im, H. Choi, O. Kim, Photodynamic therapy (PDT) resistance by PARP1 regulation on PDT-induced apoptosis with autophagy in head and neck cancer cells, J. Oral Pathol. Med., 2014, 43, 675–684.
L. M. Davids, B. Kleemann, S. Cooper, S. H. Kidson, Melanomas display increased cytoprotection to hypericin-mediated cytotoxicity through the induction of autophagy, Cell Biol. Int., 2009, 33, 1065–1072.
N. Rubio, J. Verrax, M. Dewaele, T. Verfaillie, T. Johansen, J. Piette, P. Agostinis, p38(MAPK)-regulated induction of p62 and NBR1 after photodynamic therapy promotes autophagic clearance of ubiquitin aggregates and reduces reactive oxygen species levels by supporting Nrf2-antioxidant signaling, Free Radicals Biol. Med., 2013, 67, 292–303.
A. Francois, S. Marchal, F. Guillemin, L. Bezdetnaya, mTHPC-based photodynamic therapy induction of autophagy and apoptosis in cultured cells in relation to mitochondria and endoplasmic reticulum stress, Int. J. Oncol., 2011, 39, 1537–1543.
L. Y. Xue, S. M. Chiu, N. L. Oleinick, Atg7 deficiency increases resistance of MCF-7 human breast cancer cells to photodynamic therapy, Autophagy, 2010, 6, 248–255.
L. Y. Xue, S. M. Chiu, K. Azizuddin, S. Joseph, N. L. Oleinick, The death of human cancer cells following photodynamic therapy: apoptosis competence is necessary for Bcl-2 protection but not for induction of autophagy, Photochem. Photobiol., 2007, 83, 1016–1023.
D. Separovic, A. Kelekar, A. K. Nayak, A. L. Tarca, K. Hanada, J. S. Pierce, J. Bielawski, Increased ceramide accumulation correlates with down regulation of the autophagy protein ATG-7 in MCF-7 cells sensitized to photodamage, Arch. Biochem. Biophys., 2009, 494, 101–105.
S. Luo, D. Xing, Y. Wei, Q. Chen, Inhibitive effects of photofrin on cellular autophagy, J. Cell Physiol., 2010, 224, 414–422.
Y. J. Chen, W. P. Huang, Y. C. Yang, C. P. Lin, S. H. Chen, M. L. Hsu, Y. J. Tseng, H. R. Shieh, Y. Y. Chen, J. J. Lee, Platonin induces autophagy-associated cell death in human leukemia cells, Autophagy, 2009, 5, 173–183.
E. Panzarini, V. Inguscio, L. Dini, Timing the multiple cell death pathways initiated by Rose Bengal acetate photodynamic therapy, Cell Death Dis., 2011, 2, e169.
Author information
Authors and Affiliations
Corresponding author
Rights and permissions
About this article
Cite this article
Garg, A.D., Maes, H., Romano, E. et al. Autophagy, a major adaptation pathway shaping cancer cell death and anticancer immunity responses following photodynamic therapy. Photochem Photobiol Sci 14, 1410–1424 (2015). https://doi.org/10.1039/c4pp00466c
Received:
Accepted:
Published:
Issue Date:
DOI: https://doi.org/10.1039/c4pp00466c