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Enzyme der Monosaccharidumwandlung bei dem Flußkrebs Orconectes limosus

Enzymes of monosaccharide conversion in the crayfish, Orconectes limosus

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Zeitschrift für vergleichende Physiologie Aims and scope Submit manuscript

Summary

  1. 1.

    The activities of 14 enzymes for monosaccharide conversion have been determined in up to 11 organs of the crayfish, Orconectes limosus.

  2. 2.

    Transaldolase and the transketolase as enzymes of the hexosemonophosphatepentose pathway in the different organs tested have constant proportions in their activities whereas glucose 6-phosphate dehydrogenase and 6-phosphogluconate dehydrogenase do not. On the basis of their organ specific proportions it is concluded that antennal gland, testis, and ventral nerve cord have the highest capacities in the oxidative pentose pathway; testis and ventral nerve cord have the highest capacities in nonoxidative conversions of hexose and pentose phosphates.

  3. 3.

    UDPglucose 4-epimerase as an enzyme of galactose metabolism has its highest activity in the intestine; hexose 1-phosphate uridylyltransferase, found only at very low activity values, shows its highest concentrations in gills, integumentary tissues and hepatopancreas.

  4. 4.

    Rather different fructose 1,6-diphosphate/fructose 1-phosphate activity ratios were detected when fructosediphosphate aldolase and ketose 1-phosphate aldolase were determined. According to Lebherz and Rutter (1969), however, it must be supposed, that the differences in FDP/F-1-P ratios for the crayfish tissues studied are due to proteolytic modifications and not to the presence of tissue specific aldolase variants. The conversion of fructose 1,6-diphosphate and fructose 1-phosphate is catalysed with the highest rate in abdominal muscle and heart.

  5. 5.

    Two oxidoreductases, sorbitol dehydrogenase and aldose reductase, were found in the antennal gland. Glucose or galactose dehydrogenase, UDPglucose dehydrogenase as well as the bacterial polyol dehydrogenases mannitol 1-phosphate dehydrogenase and sorbitol 6-phosphate dehydrogenase could not be detected in antennal gland and hepatopancreas.

Zusammenfassung

  1. 1.

    Die Aktivitäten von 14 Enzymen der Monosaccharidumwandlung wurden jeweils in bis zu 11 Organen von Orconectes limosus bestimmt.

  2. 2.

    Von den Enzymen des Pentosephosphat-cyclus bilden die Transaldolase und die Transketolase in den untersuchten Organen eine proportionskonstante Enzym-gruppe, nicht dagegen die Glucose-6-phosphat-dehydrogenase und 6-Phosphogluconatdehydrogenase. Nach ihren organspezifischen Proportionen besitzen Antennendrüse, Hoden und Bauchmark hohe Kapazitäten des oxydativen Pentosewegs; Hoden und Bauchmark zeigen überdies die höchsten Kapazitäten des nichtoxydativen Pentosewegs.

  3. 3.

    Von den Enzymen des Galactosestoffwechsels liegt die UDP-glucose-4-epimerase im Enddarm mit den höchsten Aktivitäten vor; die nur mit sehr niedrigen Aktivitätswerten gefundene Hexose-1-phosphat-uridyltransferase zeigt in Kiemen, Integumentgewebe und Mitteldarmdrüse ihre höchsten Konzentrationen.

  4. 4.

    Bei der Bestimmung der Fruotosediphosphataldolase und der 1-Phosphofructaldolase wurden sehr unterschiedliche Fructosediphosphat/Fructose-1-phosphat-Quotienten gefunden. Nach Lebherz und Rutter (1969) muß man aber annehmen, daß es sich dabei nicht um gewebsspezifische Aldolasevarianten wie bei den Wirbeltieren, sondern um proteolytische Modifikationen handelt. Die Umsetzung von Fructose-1,6-diphosphat und Fructose-1-phosphat wird in Schwanzmuskel und Herz mit den höchsten Geschwindigkeiten katalysiert.

  5. 5.

    Von den Oxydoreductasen wurden Sorbitdehydrogenase und Aldosereductase als Enzyme der über nichtphosphorylierte Produkte verlaufenden Fructose-Glucose-Umwandlung in der Antennendrüse gefunden. Glucosebzw. Galactosedehydrogenase, UDP-glucose-dehydrogenase sowie die bakteriellen Polyol-dehydrogenasen Mannit-1-pnosphat-dehydrogenase und Sorbit-6-phosphat-dehydrogenase konnten in Antennendrüse und Mitteldarmdrüse nicht nachgewiesen werden.

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Abbreviations

DHAP:

Dihydroxyaceton-phosphat

E-4-P:

D-Erythrose-4-phosphat

FDP:

D-Fructose-1,6-diphosphat

F-1-P:

D-Fructose-1-phosphat

F-6-P:

D-Fructose-6-phosphat

GAP:

Glycerinaldehyd-3-phosphat

Ga-1-P:

D-Galactose-1-phosphat

Gm-6-P:

D-Glucosamin-6-phosphat

G-1-P:

D-Glucose-1-phosphat

G-6-P:

D-Glucose-6-phosphat

6-PG:

D-6-Phosphogluconat

6-PGL:

D-6-Phosphogluconolacton

R-5-P:

D-Bibose-5-phosphat

Ru-5-P:

D-Ribulose-5-phosphat

S-6-P:

D-Sorbit-6-phosphat

S-7-P:

Sedoheptulose-7-phosphat

UDPG:

Uridin-5′-diphosphoglucose

UDPGa:

Uridin-5′-diphospho-galactose

X-5-P:

D-Xylulose-5-phosphat.

ALD:

Fructosediphosphataldolase

CS:

Citratsynthase

GDH:

Glycerin-1-phosphat-dehydrogenase

G6PDH:

Glucose-6-phosphat-dehydrogenase

1PFA:

1-Phosphof ructaldolase

6PGDH:

6-Phosphogluconat-dehydrogenase

SDH:

Sorbitdehydrogenase

TA:

Transaldolase

TIM:

Triose-phosphat-isomerase

TK:

Transketolase

UDPGDH:

Uridin-5′-diphospho-glucose-dehydrogenase

UDPGE:

Uridin-5′-diphospho-glucose-4-epimerase

UT:

Hexose-1-phosphaturidyl-transferase

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Lang, R. Enzyme der Monosaccharidumwandlung bei dem Flußkrebs Orconectes limosus . Z. Vergl. Physiol. 73, 285–304 (1971). https://doi.org/10.1007/BF00297677

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