Zusammenfassung
Die allergische Rhinitis (AR) ist eine sehr häufige Erkrankung mit weltweit hoher Prävalenz. Sie ist eine IgE-vermittelte und entzündungsbedingte Typ-2-Erkrankung nach Exposition gegenüber inhalativen Allergenen. Eine Vielzahl von Neuropeptiden wie Substanz P (SP), vasoaktives intestinales Peptid (VIP), „calcitonin gene-related peptide“ (CGRP), Nervenwachstumsfaktor (NGF) und Neuromedin U (NMU) können über periphere Axonreflexe oder zentrale Reflexe freigesetzt werden, mit Immunzellen interagieren und sind so an einer neurogenen Entzündung beteiligt, die zur nasalen Hyperreaktivität (NHR) der AR führt. Die eigenständige Produktion von neuroendokrinen Hormonen und Neuropeptiden durch Immunzellen wurde ebenfalls nachgewiesen. Neuroimmunzellverbände entstehen, wenn Immun- und neuronale Zellen kolokalisieren. Typische anatomische Regionen dafür sind beispielsweise die Nerv-Mastzellen-Einheit. In dieser Übersicht liegt der Fokus auf der Ausarbeitung neuroimmunologischer Kommunikationsmechanismen der AR.
Abstract
Allergic rhinitis (AR) is a very common disease with a high prevalence worldwide. It is an IgE-mediated type 2 inflammatory disease following exposure to inhalant allergens. A multitude of different neuropeptides including substance P, vasoactive intestinal peptide (VIP), calcitonin gene-related peptide (CGRP), nerve growth factor (NGF), and neuromedin U (NMU) can be released via peripheral axon or central reflexes, interact with immune cells, and thus contribute to neurogenic inflammation which causes the nasal hyperreactivity (NHR) characteristic of AR. Independent production of neuroendocrine hormones and neuropeptides by immune cells has also been demonstrated. Neuro–immune cell units arise when immune and neuronal cells colocalize, for which typical anatomic regions are, e.g., the mast cell–nerve functional unit. The focus of this review is the elucidation of neuroimmune communication mechanisms in AR.
Literatur
Gelincik A, Aydın F, Ozerman B et al (2012) Enhanced nerve growth factor expression by mast cells does not differ significantly between idiopathic and allergic rhinitis. Ann Allergy Asthma Immunol 108:396–401. https://doi.org/10.1016/j.anai.2012.04.006
Klimek L, Bachert C, Pfaar O et al (2019) ARIA guideline 2019: treatment of allergic rhinitis in the German health system. Allergol Sel 3:22–50. https://doi.org/10.5414/ALX02120E
Klimek L, Brehler R, Hamelmann E et al (2019) Evolution of subcutaneous allergen immunotherapy (part 1): from first developments to mechanism-driven therapy concepts. Allergo J Int 28:78–95
Klimek L, Brehler R, Hamelmann E et al (2019) Development of subcutaneous allergen immunotherapy (part 2): preventive aspects and innovations. Allergo J Int 28:107–119
Sanico AM, Stanisz AM, Gleeson TD et al (2000) Nerve growth factor expression and release in allergic inflammatory disease of the upper airways. Am J Respir Crit Care Med 161:1631–1635. https://doi.org/10.1164/ajrccm.161.5.9908028
Wang XD, Zheng M, Lou HF et al (2016) An increased prevalence of self-reported allergic rhinitis in major Chinese cities from 2005 to 2011. Allergy 71:1170–1180. https://doi.org/10.1111/all.12874
Wheatley LM, Togias A (2015) Clinical practice. Allergic rhinitis. N Engl J Med 372:456–463. https://doi.org/10.1056/NEJMcp1412282
Wu X, Myers AC, Goldstone AC et al (2006) Localization of nerve growth factor and its receptors in the human nasal mucosa. J Allergy Clin Immunol 118:428–433. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2006.04.037
Okubo K, Kurono Y, Ichimura K et al (2020) Japanese guidelines for allergic rhinitis 2020. Allergol Int 69:331–345. https://doi.org/10.1016/j.alit.2020.04.001
Galli SJ, Tsai M, Piliponsky AM (2008) The development of allergic inflammation. Nature 454:445–454. https://doi.org/10.1038/nature07204
Delgado M, Pozo D, Ganea D (2004) The significance of vasoactive intestinal peptide in immunomodulation. Pharmacol Rev 56:249–290. https://doi.org/10.1124/pr.56.2.7
Schiller M, Ben-Shaanan TL, Rolls A (2020) Neuronal regulation of immunity: why, how and where? Nat Rev Immunol 21:20–36. https://doi.org/10.1038/s41577-020-0387-1
Dramburg S, Walter U, Becker S et al (2021) Telemedicine in allergology: practical aspects: A position paper of the Association of German Allergists (AeDA). Allergo J Int 30:119–129. https://doi.org/10.1007/s40629-021-00167-5
Klimek L, Bergmann KC, Brehler R et al (2021) Practical handling of allergic reactions to COVID-19 vaccines: A position paper from German and Austrian Allergy Societies AeDA, DGAKI, GPA and OGAI. Allergo J Int 30:79–95. https://doi.org/10.1007/s40629-021-00165-7
Mahler V, Bonertz A, Ruoff C et al (2019) What we learned from TAO—10 years of German therapy allergen ordinance. Allergo J Int 28:330–337
Roth-Walter F (2021) Compensating functional iron deficiency in patients with allergies with targeted micronutrition. Allergo J Int 30:130–134. https://doi.org/10.1007/s40629-021-00171-9
Ullrich D (2019) Safety of a high-dose house dust mite allergoid in pediatric patients. Allergo J Int 28:96–98. https://doi.org/10.1007/s40629-018-0084-9
Undem BJ, Taylor-Clark T (2014) Mechanisms underlying the neuronal-based symptoms of allergy. J Allergy Clin Immunol 133:1521–1534. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2013.11.027
Velasco E, Delicado-Miralles M, Hellings PW et al (2022) Epithelial and sensory mechanisms of nasal hyperreactivity. Allergy 77:1450–1463. https://doi.org/10.1111/all.15259
Brierley SM, Linden DR (2014) Neuroplasticity and dysfunction after gastrointestinal inflammation. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 11:611–627. https://doi.org/10.1038/nrgastro.2014.103
Van Gerven L, Steelant B, Hellings PW (2018) Nasal hyperreactivity in rhinitis: A diagnostic and therapeutic challenge. Allergy 73:1784–1791. https://doi.org/10.1111/all.13453
Hennel M, Brozmanova M, Kollarik M (2015) Cough reflex sensitization from esophagus and nose. Pulm Pharmacol Ther 35:117–121. https://doi.org/10.1016/j.pupt.2015.10.007
Braunstahl GJ, Fokkens WJ, Overbeek SE et al (2003) Mucosal and systemic inflammatory changes in allergic rhinitis and asthma: a comparison between upper and lower airways. Clin Exp Allergy 33:579–587. https://doi.org/10.1046/j.1365-2222.2003.01652.x
Baluk P (1997) Neurogenic inflammation in skin and airways. J Investig Dermatol Symp Proc 2:76–81. https://doi.org/10.1038/jidsymp.1997.15
Skaper SD (2017) Nerve growth factor: a neuroimmune crosstalk mediator for all seasons. Immunology 151:1–15. https://doi.org/10.1111/imm.12717
Woolf CJ (2010) Central sensitization: implications for the diagnosis and treatment of pain. Pain 152:S2–S15. https://doi.org/10.1016/j.pain.2010.09.030
Meng Y, Lu H, Wang C et al (2021) Naso-ocular neuropeptide interactions in allergic rhinoconjunctivitis, rhinitis, and conjunctivitis. World Allergy Organ J 14:100540. https://doi.org/10.1016/j.waojou.2021.100540
Kabata H, Artis D (2019) Neuro-immune crosstalk and allergic inflammation. J Clin Invest 129:1475–1482. https://doi.org/10.1172/JCI124609
Raap U, Sumbayev VV, Gibbs BF (2015) The role of basophils in allergic inflammation. Allergo J 24:152–157
Anonym (2017) Neuroimmune communication. Nat Neurosci 20:127–127. https://doi.org/10.1038/nn.4496
Douglas SD, Leeman SE (2010) Neurokinin‑1 receptor: functional significance in the immune system in reference to selected infections and inflammation. Ann NY Acad Sci 1217:83–95. https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2010.05826.x
Ma Y, Liu C, Xi G et al (2022) Bioinformatic analysis and cellular assays identify substance P influencing th17/Treg differentiation via the MyD88 pathway as a potential contributor to the progression of asthma and allergic rhinitis. Dis Markers 2022:3843954. https://doi.org/10.1155/2022/3843954
Douglas SD, Leeman SE (2018) Is substance P a nasal epithelial neuropeptide? J Allergy Clin Immunol 142:1677. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2018.05.034
Dinh QT, Groneberg DA, Mingomataj E et al (2003) Expression of substance P and vanilloid receptor (VR1) in trigeminal sensory neurons projecting to the mouse nasal mucosa. Neuropeptides 37:245–250. https://doi.org/10.1016/s0143-4179(03)00065-9
McDonald JL, Smith PK, Smith CA et al (2016) Effect of acupuncture on house dust mite specific IgE, substance P, and symptoms in persistent allergic rhinitis. Ann Allergy Asthma Immunol 116:497–505. https://doi.org/10.1016/j.anai.2016.04.002
Larsson O, Tengroth L, Xu Y et al (2017) Substance P represents a novel first-line defense mechanism in the nose. J Allergy Clin Immunol 141:128–136.e3. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2017.01.021
Huang F, Yin J‑N, Wang H‑B et al (2017) Association of imbalance of effector T cells and regulatory cells with the severity of asthma and allergic rhinitis in children. Allergy Asthma Proc 38:70–77. https://doi.org/10.2500/aap.2017.38.4076
Ohnmacht C (2016) Microbiota, regulatory T cell subsets, and allergic disorders. Allergo J Int 25:114–123. https://doi.org/10.1007/s40629-016-0118-0
Ono S, Kabashima K (2015) Novel insights into the role of immune cells in skin and inducible skin-associated lymphoid tissue (iSALT). Allergo J Int 24:170–179. https://doi.org/10.1007/s40629-015-0065-1
Moattari CR, Granstein RD (2021) Neuropeptides and neurohormones in immune, inflammatory and cellular responses to ultraviolet radiation. Acta Physiol 232:e13644. https://doi.org/10.1111/apha.13644
McCary C, Tancowny BP, Catalli A et al (2010) Substance P downregulates expression of the high affinity IgE receptor (FcepsilonRI) by human mast cells. J Neuroimmunol 220:17–24. https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2009.12.006
Yokota E, Kuyama S, Ogawa M et al (2008) Substance P is involved in the effect of histamine H3 receptor agonist, Sch 50971 on nasal allergic symptoms in mice. Int Immunopharmacol 8:1083–1088. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2008.03.018
Eyerich K, Eyerich S (2015) Th22 cells in allergic disease. Allergo J Int 24:1–7. https://doi.org/10.1007/s40629-015-0039-3
Fischer A, Wussow A, Cryer A et al (2004) Neuronal plasticity in persistent perennial allergic rhinitis. J Occup Environ Med 47:20–25. https://doi.org/10.1097/01.jom.0000150238.77663.49
Gonzalez-Rey E, Anderson P, Delgado M (2007) Emerging roles of vasoactive intestinal peptide: a new approach for autoimmune therapy. Ann Rheum Dis 66(Suppl 3):iii70–iii76. https://doi.org/10.1136/ard.2007.078519
Verma AK, Manohar M, Upparahalli Venkateshaiah S et al (2017) Neuroendocrine cells derived chemokine vasoactive intestinal polypeptide (VIP) in allergic diseases. Cytokine Growth Factor Rev 38:37–48. https://doi.org/10.1016/j.cytogfr.2017.09.002
Huber M, Lohoff M (2015) Change of paradigm: CD8+ T cells as important helper for CD4+ T cells during asthma and autoimmune encephalomyelitis. Allergo J Int 24:8–15. https://doi.org/10.1007/s40629-015-0038-4
El-Shazly AE, Begon DY, Kustermans G et al (2012) Novel association between vasoactive intestinal peptide and CRTH2 receptor in recruiting eosinophils: a possible biochemical mechanism for allergic eosinophilic inflammation of the airways. J Biol Chem 288:1374–1384. https://doi.org/10.1074/jbc.M112.422675
Kim D‑H, Park I‑H, Cho J‑S et al (2011) Alterations of vasoactive intestinal polypeptide receptors in allergic rhinitis. Am J Rhinol Allergy 25:e44–47. https://doi.org/10.2500/ajra.2011.25.3568
Jowett GM, Neves JF (2018) Commentary: Neuronal regulation of type 2 innate lymphoid cells via neuromedin U. Front Pharmacol 9:230. https://doi.org/10.3389/fphar.2018.00230
Klose CSN, Mahlakõiv T, Moeller JB et al (2017) The neuropeptide neuromedin U stimulates innate lymphoid cells and type 2 inflammation. Nature 549:282–286. https://doi.org/10.1038/nature23676
Cardoso V, Chesné J, Ribeiro H et al (2017) Neuronal regulation of type 2 innate lymphoid cells via neuromedin U. Nature 549:277–281. https://doi.org/10.1038/nature23469
Wallrapp A, Riesenfeld SJ, Burkett PR et al (2017) The neuropeptide NMU amplifies ILC2-driven allergic lung inflammation. Nature 549:351–356. https://doi.org/10.1038/nature24029
Nagashima H, Mahlakõiv T, Shih H‑Y et al (2019) Neuropeptide CGRP limits group 2 innate lymphoid cell responses and constrains type 2 inflammation. Immunity 51:682–695.e686. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2019.06.009
Matsuo Y, Yanase Y, Irifuku R et al (2018) Neuromedin U directly induces degranulation of skin mast cells, presumably via MRGPRX2. Allergy 73:2256–2260. https://doi.org/10.1111/all.13555
Nockher WA, Renz H (2003) Neurotrophins in inflammatory lung diseases: modulators of cell differentiation and neuroimmune interactions. Cytokine Growth Factor Rev 14:559–578. https://doi.org/10.1016/s1359-6101(03)00071-6
Manti S, Brown P, Perez MK et al (2016) The role of neurotrophins in inflammation and allergy. Vitam Horm 104:313–341. https://doi.org/10.1016/bs.vh.2016.10.010
Raap U, Braunstahl G‑J (2010) The role of neurotrophins in the pathophysiology of allergic rhinitis. Curr Opin Allergy Clin Immunol 10:8–13. https://doi.org/10.1097/ACI.0b013e328334f5de
Bresciani M, Lalibertè F, Lalibertè MF et al (2009) Nerve growth factor localization in the nasal mucosa of patients with persistent allergic rhinitis. Allergy 64:112–117. https://doi.org/10.1111/j.1398-9995.2008.01831.x
Iyengar S, Johnson KW, Ossipov MH et al (2019) CGRP and the trigeminal system in migraine. Headache 59:659–681. https://doi.org/10.1111/head.13529
Vasko MR, Habashy Malty R, Guo C et al (2014) Nerve growth factor mediates a switch in intracellular signaling for PGE2-induced sensitization of sensory neurons from protein kinase A to Epac. PLoS One 9:e104529. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0104529
Author information
Authors and Affiliations
Corresponding author
Ethics declarations
Interessenkonflikt
Gemäß den Richtlinien des Springer Medizin Verlags werden Autorinnen und Autoren sowie die Wissenschaftliche Leitung im Rahmen der Manuskripterstellung und Manuskriptfreigabe aufgefordert, eine vollständige Erklärung zu ihren finanziellen und nichtfinanziellen Interessen abzugeben.
Autoren
M. Gröger: A. Finanzielle Interessen: ALK-Abelló Arzneimittel GmbH (Honorare, Kostenerstattungen) | Allergopharma GmbH & Co. KG (Kostenerstattungen) | AstraZeneca GmbH (Kostenerstattungen) | Bencard Allergie GmbH (Honorare, Kostenerstattungen) | Glaxo Smith Kline GmbH & Co. KG (Honorare) | HAL Allergie GmbH (Honorare, Kostenerstattungen) | LETI Pharma GmbH (Honorare) | Mylan Germany GmbH (Kostenerstattungen) | Novartis Pharma GmbH (Honorare) | Phadia – Thermo Fisher Scientific Inc. (Honorare, Kostenerstattungen) | Sanofi-Aventis Deutschland GmbH (Honorare, Kostenerstattungen) | Shire Deutschland GmbH (Kostenerstattungen) | Stallergenes GmbH (Honorare, Kostenerstattungen). – B. Nichtfinanzielle Interessen: Oberarzt am der Klinik und Poliklinik für Hals-Nasen-Ohrenheilkunde, LMU Klinikum, München | Mitgliedschaften: AeDA (Vorsitzender der Regionalgruppe Bayern), DGHNO-KHC (Mitglied des Vorstands der Arbeitsgemeinschaft Klinische Immunologie, Allergologie und Umweltmedizin), DGAKI, DGPP. I. Casper: A. Finanzielle Interessen: I. Casper gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Studien- und wissenschaftliche Projektkoordination am Zentrum für Rhinologie und Allergologie, Wiesbaden. C. Bergmann: A. Finanzielle Interessen: C. Bergmann gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Niedergelassener HNO-Arzt | Mitgliedschaften: ARDA, EAACI, DGHNO, BVHNO. M.L. Polk: A. Finanzielle Interessen: M.L. Polk gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Assistenzärztin HNO-Uniklinik Dresden | Mitgliedschaften: AeDA, HNO Arbeitsgemeinschaft Klinische Immunologie, Allergologie und Umweltmedizin. M. Cuevas: A. Finanzielle Interessen: M. Cuevas gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Angestellte HNO Ärztin, Klinik und Poliklinik für HNO-Heilkunde, Universitätsklinikum Carl Gustav Carus | an der Technischen Universität Dresden, Anstalt des öffentlichen Rechts des Freistaates Sachsen, Fetscherstraße 74, 01307 Dresden | Mitgliedschaften: AeDA, DGHNO, SDGHNO. P. Werminghaus: A. Finanzielle Interessen: Referent für: GlaxoSmithKline (GSK), Sanofi Aventis, Bencard Allergy GmbH/Allergy Therapeutics, Novartis und | Stallergenes. – Berater für: GlaxoSmithKline (GSK), Sanofi Aventis, Bencard Allergy GmbH/Allergy Therapeutics und AstraZeneca. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Niedergelassener Arzt und Teilhaber in der Ärztepartnerschaft der Praxis Derichs, Hirschfeld + Werminghaus, HNO und Allergologie in Düsseldorf | Mitgliedschaften bei folgenden Organisationen: AeDA, DGHNO, Deutsche Akademie für Allergologie und klinische Immunologie, HNO-BV, ERS, EAACI. J. Hagemann: A. Finanzielle Interessen: J. Hagemann gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Funktionsoberarzt | Facharzt für Hals-Nasen-Ohren-Heilkunde, Stv. Koordinator des Kopf-Hals-Tumorzentrums, Zusatzbezeichnung Allergologie, Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz, Hals-Nasen-Ohren-Klinik und Poliklinik, Mainz. T. Huppertz: A. Finanzielle Interessen: T. Huppertz gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Oberarzt, Hals-Nasen-Ohrenklinik Universitätsmedizin Mainz. F. Bärhold: A. Finanzielle Interessen: F. Bärhold gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Angestellte Assistenzärztin, Klinik für Hals-Nasen-Ohrenheilkunde, Uniklinik Tübingen | Mitgliedschaft: AEDA. L. Klimek: A. Finanzielle Interessen: Honorar für Studiendurchführung: GSK, Sanofi, AstraZeneca, Allergopharma, ALK Abelló, Inmunotek. – Honorar: Sanofi, AstraZeneca, Allergopharma, MEDA/Mylan, HAL Allergie, GSK, ALK Abelló, LETI Pharma | . – B. Nichtfinanzielle Interessen: Niedergelassener HNO-Arzt, HNO Gemeinschaftspraxis, Wiesbaden; Institutsleiter, Zentrum für Rhinologie und Allergologie, Wiesbaden | Präsident AeDA | Mitgliedschaften: AeDA, DGHNO, Deutsche Akademie für Allergologie und klinische Immunologie, HNOBV, GPA, | EAACI. K. Dziadziulia: A. Finanzielle Interessen: K. Dziadziulia gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Laborleiter beim Ärzteverband Deutscher Allergologen e. V. (AeDA), Wiesbaden. S. Becker: A. Finanzielle Interessen: Forschungsförderung von: BMBF, Altamira AG, Karl-Storz AG, Honorarzahlungen von: ALK Abello, Allergopharma, Allergy Therapeutics, Bencard Allergy, HAL Allergy, Thermo Fisher Scientific, Sanofi Genzyme, GSK, Novartis, AstraZeneca; offizieller Berater bzw. Schulungsreferent von [GS1]: Sanofi, Bencard Allergy, ALK Abello, Novartis, GSK, AstraZeneca, – B. Nichtfinanzielle Interessen: Leitender Oberarzt/Stellvertretender Direktor, Universitätsklinik für Hals-Nasen-Ohren-Heilkunde, Kopf- und Halschirurgie, Eberhard-Karls-Universität Tübingen.
Wissenschaftliche Leitung
Die vollständige Erklärung zum Interessenkonflikt der Wissenschaftlichen Leitung finden Sie am Kurs der zertifizierten Fortbildung auf www.springermedizin.de/cme.
Der Verlag
erklärt, dass für die Publikation dieser CME-Fortbildung keine Sponsorengelder an den Verlag fließen.
Für diesen Beitrag wurden von den Autor/-innen keine Studien an Menschen oder Tieren durchgeführt. Für die aufgeführten Studien gelten die jeweils dort angegebenen ethischen Richtlinien.
Additional information
Wissenschaftliche Leitung
C.J. Busch, Greifswald
M. Canis, München
B. Hofauer, München
T. Hoffmann, Ulm
P. Mir-Salim, Berlin
B. Olzowy, Landsberg am Lech
S. Strieth, Bonn
QR-Code scannen & Beitrag online lesen
CME-Fragebogen
CME-Fragebogen
Welcher der folgenden Kommunikationswege ist eine grundlegende Komponente der Interaktion zwischen Nerven und Immunzellen bei der allergischen Rhinitis (AR)?
Die Basis der Interaktion zwischen Nervensystem und Immunsystem bilden ausschließlich zentral ausgeschüttete Zytokine.
Neuroendokrine Mediatoren binden auf Zellen des immunologischen und neuroendokrinen Systems an jeweils unterschiedliche und für die jeweilige Zielzelle hochspezifische Rezeptoren.
Effekte neuroendokriner Mediatoren, wie Zytokinen, Neuropeptiden und neuroendokrinen Hormonen auf das Immunsystem.
Wirkung über spezialisierte direkte Afferenzen mit Synapsenverbindungen zu gewebsansässigen Mastzellen auf das neuroendokrine System.
Wirkungsvermittlung über direkte Zellverschmelzung von Immunzellen und Neuronen.
Welche Aussage zur nasalen Hyperreaktivität trifft zu?
Nasale Nozizeptoren sind als primäre motorische Neuronen zum Trigeminusganglion verschaltet.
Nasale Nozizeptoren reagieren ausschließlich auf Schmerz und Druck als Reizauslöser.
Weniger als 10 % der Patienten mit allergischen Rhinitis (AR) leiden an einer ausgeprägten nasalen Hyperreaktivität.
Typische Symptome der nasalen Hyperreaktivität sind Niesen, Rhinorrhö, Juckreiz und Obstruktion auf unspezifische, nichtallergische Reize.
Dem Pathomechanismus der nasalen Hyperreaktivität liegt eine Fehlfunktion eosinophiler Granulozyten zugrunde.
Welche Aussage zu neuroimmunologischen Mechanismen ist richtig?
Typ-2-Zytokine aktivieren sensorische Nerven über das thymische stromale Lymphopoetin (TSLP).
Neuropeptide können nicht direkt auf Immunzellen wirken.
Neuropeptide wirken ausschließlich peripher, aber nicht im zentralen Nervensystem.
Juckreiz als Symptom ist Zeichen einer Mastzellabhängigen Reaktion und schließt eine neuroimmunologische Komponente aus.
Katecholamine werden von Th2-Zellen produziert.
Ein 43-jähriger Patient mit nachgewiesener Sensibilisierung auf Beifuß und Ragweed (Ambrosia) gibt ganzjährige Beschwerden in Form von Nasenatmungsbehinderung und Nasenlaufen sowie häufiges Niesen bei Reizen wie Düften, heißen Speisen und körperlicher Aktivität an. Eine perenniale Allergie wurde bereits ausgeschlossen. Welche der folgenden Therapien würden Sie am ehesten empfehlen?
Ganztägiges Tragen einer FFP2-Maske
Rotlicht für eine Stunde am Tag
Kamillendampfbäder 3‑mal täglich
Topische Anwendung von Fluticasonpropionat
Systemische Einnahme von Kortikosteroiden
Welche Aussage zur Substanz P (SP) trifft zu?
SP ist ein Mediator ausschließlich im peripheren Nervensystem.
SP bindet an freies IgE und reguliert so die Aktivität der allergischen Rhinitis (AR).
Die nasale Hyperreaktivität geht einher mit einer erniedrigten Anzahl SP-positiver Nervenfasern.
SP hat keinen Einfluss auf die Expression von Zytokinen in Mastzellen.
Immunzellen wie Mastzellen und eosinophile Granulozyten können SP synthetisieren und freisetzen.
Welche Aussage zum vasoaktiven intestinalen Peptid (VIP) trifft zu?
Das Ganglion trigeminale ist Hauptursprung der VIP enthaltenden Nervenfasern der oberen Atemwege.
Eosinophile Granulozyten können VIP bilden, andere Immunzellen wie Mastzellen und Lymphozyten können VIP nicht bilden, exprimieren aber Rezeptoren für die Bindung von VIP.
VIP-positive Fasern wurden signifikant vermindert in Allergische-Rhinitis(AR)-Gewebe nachgewiesen.
Durch Blockade von CRTH2-Rezeptor und VPAC-2-Rezeptoren, auf denen VIP an Immunzellen bindet, kann die allergische Entzündungsreaktion in den Atemwegen gezielt stimuliert werden.
Die nasale Obstruktion kann als klinisches Zeichen einer VIP-vermittelten Reaktion auftreten.
Welche Aussage zum Neuromedin U (NMU) trifft zu?
NMU ist ein Peptid mit 21 Aminosäuren.
NMU kann am Neuromedin-U-Rezeptor 1 (Nmur1) binden.
NMU vermindert die Expression von Interleukin(IL)-5 und IL-13.
NMU haben keinen Einfluss auf natürliche lymphoide Zellen („innate lymphoid cells“).
NMU kann die Mastzelldegranulation abrupt stoppen.
Welche Aussage zum Nervenwachstumsfaktor (NGF) trifft zu?
NGF gehört zur Familie der Interleukine.
NGF reguliert die Differenzierung von Immunoblasten.
NGF konnte bislang in der Haut, der Bronchialschleimhaut, nicht aber im Nasengewebe nachgewiesen werden.
Mastzellen und Eosinophile enthalten NGF.
NGF-positive Nervenfasern sind bei Patienten mit allergischen Erkrankungen vermindert nachweisbar.
Welche Aussage zum „calcitonin gene-related peptide“ (CGRP) trifft zu?
CGRP kann zwar aus peripheren, nicht aber aus zentralen Nerven freigesetzt werden.
CGRP ist an der Vermittlung der Vasokonstriktion beteiligt.
CGRP kann an der Mastzelldegranulation beteiligt sein.
CGRP ist an der Th1-Differenzierung beteiligt.
CGRP hemmt die Produktion von Interleukin(IL)-5.
Welche Aussage zu Entzündungsprozessen bei der allergischen Rhinitis (AR) trifft zu?
Neuropeptide können von Nervenzellen, nicht aber von Immunzellen sezerniert werden.
Spezifische Rezeptoren für Neuropeptide finden sich spezifisch entweder auf Neuronen oder auf Immunzellen.
Motorische Nerven sind an neuroimmunologischen Regulationseinheiten innerhalb der Nasenschleimhaut beteiligt.
Die AR ist als Th2-Inflammation über neuroimmunologische Prozesse mit der nasalen Hyperreaktivität funktionell verknüpft.
Die Interaktion zwischen Nervenzellen und Immunzellen innerhalb der Nasenschleimhaut bei der AR ist unidirektional.
Rights and permissions
About this article
Cite this article
Klimek, L., Werminghaus, P., Bergmann, C. et al. Neuroimmunologie der allergischen Rhinitis. HNO 71, 337–346 (2023). https://doi.org/10.1007/s00106-023-01292-z
Accepted:
Published:
Issue Date:
DOI: https://doi.org/10.1007/s00106-023-01292-z
Schlüsselwörter
- Allergie und Immunologie
- Ionenkanäle
- Intrazelluläre Singalpeptide und -proteine
- Neurotransmitter
- Rhinorrhö