Skip to main content
SpringerLink
Log in

Synoviaveränderungen bei Infektion

Native septische Arthritis und Gelenkinfektion nach Kreuzbandrekonstruktion

Infectious synovial alterations

Native septic arthritis and joint infections after cruciate ligament reconstruction

  • Leitthema
  • Published:
Arthroskopie Aims and scope

Zusammenfassung

Hintergrund

Die septische Arthritis ist eine infektiöse Synovialentzündung, welche durch Mikroorganismen (Bakterien, selten Pilze oder Mykobakterien) verursacht wird. Sie entsteht meistens durch hämatogene Streuung von einem entfernten Infektfokus und manifestiert sich mit akuter Klinik. In der Mehrheit der Fälle liegt eine Monoarthritis von großen, lasttragenden Gelenken vor. Das Erregerspektrum hängt von Komorbiditäten und spezifischen Expositionen ab und umfasst Staphylokokken, Streptokokken, gramnegative Bakterien sowie selten Pilze, Gonokokken, Coxiella burnetii, Brucellen oder Mykobakterien.

Diagnostik

Goldstandard zur Diagnosestellung der septischen Arthritis ist die Gelenkaspiration mit nachfolgender mikrobiologischer, zytologischer und mikroskopischer Untersuchung der Synovialflüssigkeit. Zur weiteren Abklärung einer zugrundeliegenden systemischen Infektion sollten Blutkulturen abgenommen werden. Intraoperativ ist zudem die Asservation von Gewebeproben und – falls vorhanden – das Einschicken des Transplantats/Implantats zur mikrobiologischen Analyse empfohlen. Aufgrund des arthroskopischen und radiologischen Befunds wird eine Stadieneinteilung nach Stutz und Gächter angewendet.

Therapie

Schlüssel zum Erfolg ist die Kombination einer adäquaten chirurgischen sowie antibiotischen Therapie, welche eine gute interdisziplinäre Zusammenarbeit zwischen Mikrobiologen, Infektiologen, Rheumatologen und Orthopäden erfordert. Ziel ist eine rasche mechanische Entlastung des Gelenks mittels Arthroskopie oder Arthrotomie, um eine Knorpeldestruktion und somit Folgeschäden zu vermeiden.

Abstract

Background

Septic arthritis is an infectious synovial inflammation caused by microorganisms (bacteria, rarely fungi or mycobacteria). It usually results from hematogenous dissemination from a distant infection focus and manifests with acute clinical symptoms. In the majority of cases, monoarthritis of large weight-bearing joints is present. The spectrum of pathogens depends on the comorbidities and specific exposures and includes staphylococci, streptococci, gram-negative bacteria and rarely fungi, gonococci, Coxiella burnetii, Brucella and Mycobacteria.

Diagnostics

The diagnostic gold standard of septic arthritis is joint aspiration followed by microbiological, cytological and microscopic examinations of the synovial fluid. Blood cultures are obtained for further clarification of an underlying systemic infection. Intraoperative collection of tissue samples and, if applicable, sending the graft/implant for microbiological analysis are recommended. Based on the arthroscopic and radiological findings, a staging according to Stutz and Gächter is practiced.

Treatment

The key to success is the combination of adequate surgical as well as antibiotic treatment, which requires good interdisciplinary teamwork of microbiologists, infectious disease specialists, rheumatologists and orthopedic surgeons. The goal is a rapid mechanical relief of the joint by means of arthroscopy or arthrotomy to avoid cartilage destruction and subsequent damage.

This is a preview of subscription content, log in via an institution to check access.

Access this article

Log in via an institution

Price excludes VAT (USA)
Tax calculation will be finalised during checkout.

Instant access to the full article PDF.

Institutional subscriptions

Abb. 1

Literatur

  1. Mathews CJ, Weston VC, Jones A et al (2010) Bacterial septic arthritis in adults. Lancet 375(9717):846–855

    Article  Google Scholar 

  2. McBride S, Mowbray J, Caughey W et al (2020) Epidemiology, management, and outcomes of large and small native joint septic arthritis in adults. Clin Infect Dis 70(2):271–279

    Article  Google Scholar 

  3. Allison DC, Holtom PD, Patzakis MJ et al (2010) Microbiology of bone and joint infections in injecting drug abusers. Clin Orthop Relat Res 468(8):2107–2112

    Article  Google Scholar 

  4. Ross JJ, Shamsuddin H (2004) Sternoclavicular septic arthritis: review of 180 cases. Medicine 83(3):139–148

    Article  Google Scholar 

  5. Stutz G, Gächter A (2001) Diagnosis and stage-related therapy of joint infections. Unfallchirurg 104(8):682–686

    Article  CAS  Google Scholar 

  6. Shirtliff ME, Mader JT (2002) Acute septic arthritis. Clin Microbiol Rev 15(4):527–544

    Article  Google Scholar 

  7. Ateschrang A, Albrecht D, Schroeter S et al (2011) Current concepts review: septic arthritis of the knee pathophysiology, diagnostics, and therapy. Wien Klin Wochenschr 123(7–8):191–197

    Article  Google Scholar 

  8. Margaretten ME, Kohlwes J, Moore D et al (2007) Does this adult patient have septic arthritis? JAMA 297(13):1478–1488

    Article  CAS  Google Scholar 

  9. Turner EHG, Lang MDH, Spiker AM (2021) A narrative review of the last decade’s literature on the diagnostic accuracy of septic arthritis of the native joint. J Exp Orthop 8(1):3

    Article  Google Scholar 

  10. Sharff KA, Richards EP, Townes JM (2013) Clinical management of septic arthritis. Curr Rheumatol Rep 15(6):332

    Article  Google Scholar 

  11. Hughes JG, Vetter EA, Patel R et al (2001) Culture with BACTEC Peds Plus/F bottle compared with conventional methods for detection of bacteria in synovial fluid. J Clin Microbiol 39(12):4468–4471

    Article  CAS  Google Scholar 

  12. Bonilla H, Kepley R, Pawlak J et al (2011) Rapid diagnosis of septic arthritis using 16S rDNA PCR: a comparison of 3 methods. Diagn Microbiol Infect Dis 69(4):390–395

    Article  CAS  Google Scholar 

  13. Shah K, Spear J, Nathanson LA et al (2007) Does the presence of crystal arthritis rule out septic arthritis? J Emerg Med 32(1):23–26

    Article  Google Scholar 

  14. Baillet A, Trocmé C, Romand X et al (2019) Calprotectin discriminates septic arthritis from pseudogout and rheumatoid arthritis. Rheumatology 58(9):1644–1648

    Article  CAS  Google Scholar 

  15. Gratacos J, Vila J, Moya F et al (1995) D‑lactic acid in synovial fluid. A rapid diagnostic test for bacterial synovitis. J Rheumatol 22(8):1504–1508

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  16. Lenski M, Scherer MA (2014) Analysis of synovial inflammatory markers to differ infectious from gouty arthritis. Clin Biochem 47(1-2):49–55

    Article  CAS  Google Scholar 

  17. Pool LD, Van Delft D, Thomassen BJ et al (2020) Joint needle aspiration compared to tissue samples in septic arthritis of the native knee. Acta Orthop Belg 86(1):64–68

    PubMed  Google Scholar 

  18. Kolbel B, Wienert S, Dimitriadis J et al (2015) CD15 focus score for diagnostics of periprosthetic joint infections : Neutrophilic granulocytes quantification mode and the development of morphometric software (CD15 quantifier). Z Rheumatol 74(7):622–630

    Article  CAS  Google Scholar 

  19. Krenn V, Morawietz L, Perino G et al (2014) Revised histopathological consensus classification of joint implant related pathology. Pathol Res Pract 210(12):779–786

    Article  CAS  Google Scholar 

  20. Yanmış I, Ozkan H, Koca K et al (2011) The relation between the arthroscopic findings and functional outcomes in patients with septic arthritis of the knee joint, treated with arthroscopic debridement and irrigation. Acta Orthop Traumatol Turc 45(2):94–99

    Article  Google Scholar 

  21. Torres-Claramunt R, Gelber P, Pelfort X et al (2016) Managing septic arthritis after knee ligament reconstruction. Int Orthop 40(3):607–614

    Article  Google Scholar 

  22. Maletis GB, Inacio MC, Reynolds S et al (2013) Incidence of postoperative anterior cruciate ligament reconstruction infections: graft choice makes a difference. Am J Sports Med 41(8):1780–1785

    Article  Google Scholar 

  23. Mouzopoulos G, Fotopoulos VC, Tzurbakis M (2009) Septic knee arthritis following ACL reconstruction: a systematic review. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc 17(9):1033–1042

    Article  Google Scholar 

  24. Wang C, Ao Y, Wang J et al (2009) Septic arthritis after arthroscopic anterior cruciate ligament reconstruction: a retrospective analysis of incidence, presentation, treatment, and cause. Arthroscopy 25(3):243–249

    Article  Google Scholar 

  25. Murphy MV, Du DT, Hua W et al (2016) Risk factors for surgical site infections following anterior cruciate ligament reconstruction. Infect Control Hosp Epidemiol 37(7):827–833

    Article  Google Scholar 

  26. Williams RJ 3rd, Laurencin CT, Warren RF et al (1997) Septic arthritis after arthroscopic anterior cruciate ligament reconstruction. Diagnosis and management. Am J Sports Med 25(2):261–267

    Article  Google Scholar 

  27. Ruiz-Iban MA, Diaz HJ, Martinez VIC et al (2015) Evolution of C‑reactive protein values in the first month after anterior cruciate ligament reconstruction: reference values. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc 23(3):763–769

    Article  Google Scholar 

  28. Naendrup JH, Marche B, de Sa D et al (2020) Vancomycin-soaking of the graft reduces the incidence of septic arthritis following ACL reconstruction: results of a systematic review and meta-analysis. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc 28(4):1005–1013

    Article  Google Scholar 

  29. Renz N, Müller M, Perka C et al (2016) Implantatassoziierte Infektion – Diagnostik. Chirurg 87:813–821. https://doi.org/10.1007/s00104-016-0234-x

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

Download references

Author information

Authors and Affiliations

  1. Centrum für Muskuloskeletale Chirurgie, Charité – Universitätsmedizin Berlin, Augustenburger Platz 1, 13353, Berlin, Deutschland

    Nora Renz & Andrej Trampuz

  2. Universitätsklinik für Infektiologie, Inselspital Bern, Universitätsspital Bern, Bern, Schweiz

    Nora Renz

Authors
  1. Nora Renz
    View author publications

    You can also search for this author in PubMed Google Scholar

  2. Andrej Trampuz
    View author publications

    You can also search for this author in PubMed Google Scholar

Corresponding author

Correspondence to Nora Renz.

Ethics declarations

Interessenkonflikt

N. Renz und A. Trampuz geben an, dass kein Interessenkonflikt besteht.

Für diesen Beitrag wurden von den Autoren keine Studien an Menschen oder Tieren durchgeführt. Für die aufgeführten Studien gelten die jeweils dort angegebenen ethischen Richtlinien.

Additional information

Redaktion

P. Lobenhoffer, Hannover

J. Kriegsmann, Trier

W. Hackl, Innsbruck

Mehr Informationen zum Thema: Pocket Guide der PRO-IMPLANT Stiftung zum Thema septische Arthritis und Infektionen nach Kreuzbandrekonstruktion: https://pro-implant.org/tools/pocket-guide/4

figure qr

QR-Code scannen & Beitrag online lesen

Rights and permissions

Reprints and permissions

About this article

Check for updates. Verify currency and authenticity via CrossMark

Cite this article

Renz, N., Trampuz, A. Synoviaveränderungen bei Infektion. Arthroskopie 35, 194–202 (2022). https://doi.org/10.1007/s00142-022-00526-6

Download citation

  • Accepted:

  • Published:

  • Issue Date:

  • DOI: https://doi.org/10.1007/s00142-022-00526-6

Schlüsselwörter

Keywords

Search

Navigation