Abstract
Secretory cells and tissues are concerned with the accumulation of metabolism by products which are not used as reserve substances. Most secretory cells are specialized cells derived from elements belonging to other tissues, mainly epidermis or parenchymatous tissues. In such cases, they do not constitute true independent tissues and it is justified to speak of secretory parenchymas or secretory epidermis.
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References
Archer B, Barnard D, Cockbain E, Dickenson PB, McMullen A (1963) - Structure, composition and biochemistry of Hevea latex. In: Bateman (ed) The chemistry and physics of rubber-like substances. Mac Laren, London
Artschwager E (1946) Contribution to the morphology and anatomy of Cryptostegia (Cryptostegia grandiflora). US Dept Agric Tech Bull 915
Artschwager E, Mc Guire RC (1943) Contribution to the morphology and anatomy of the Russian dandelion (Taraxacum koksaghyz). US Dept Agric Tech Bull 843
Ascensão L (1985) Estruturas secretoras em Artemisia campestris L Differenciação e processo secretor. Thesis Dr Biol, Univ Lisboa
Ascensão L, Pais MSS (1981) Ultrastructural aspects of secretory trichomes in Cistus monspeliensis. In: Components of productivity of mediterranean climate regions. Junk, The Hague, pp 27–38
Ascensão L, Pais MSS (1985) Différenciation et processus sécréteur des trichomes & Artemisia campestris, ssp. maritima (Compositae). Ann Sci Nat Bot 13e sér 7: 149–171
Baranova EA (1935) Ontogeny of the laticiferous system of tau–saghyz. (Scorzonera tau–saghyz Lipsch et Bosse) Bot Zh SSSR 20: 600–616
Bary A De (1877) Vergleichende Anatomie der Vegetationsorgane der Phanerogamen und Farne. Engelmann, Leipzig, 663 p. Engl ed: Comparative anatomy of the vegetative organs of the phanerogams and ferns. Clarendon Oxford (1884)
Blazer HW (1945) Anatomy of Cryptostegia grandiflora with special reference to the latex. Am J Bot 32: 135–141
Bobilioff W (1923) Anatomy and physiology of Hevea brasiliensis. Part I. Anatomy of Hevea brasiliensis. Art Institut Orell Füssli, Zürich
Bruni A, Dall’olio G, Fasulo M (1974) Morphological aspect of the nuclei in mature articulated laticifers of Calystegia soldanella. Experientia (Basel) 30: 1390–1391
Buvat R (1971) Origin and continuity of cell vacuoles. In: Reinert I and Ursprung H (ed) Origin and continuity of cell organelles. Springer, Berlin Heidelberg New York, pp 127–157
Buvat R (1981) Vésicules alvéolées et vésicules épineuses dans les racines de l’Orge (Hordeum sativum). CR Acad Sei Paris sér III 292: 825–832
Buvat R, Robert G (1979) Vacuole formation in the actively growing root meristem of barley (Hordeum sativum). Am J Bot 66: 1219–1237
Cameron D (1936) An investigation of the latex systems in Euphorbia marginata, with particular attention to the distribution of the latex in the embryo. Bot Soc Edinb Trans Proc 32: 187–194
Chauveaud MG (1891) Recherches embryogéniques sur l’appareil laticifère des Euphorbiacées, Urticacées, Apocynées et Asclépiadacées. Ann Sci Nat Bot sér 7 14: 1–161
Christensen AK, Fawcett DW (1960) The fine structure of testicular interstitial cells in the opossum. Anat Ree 136: 333
Clautriau G (1889) La localisation des alcaloides du Pavot. J Pharm Chim 20: 161 (Cited by Giordani, 1981b)
Collier HOJ, Chescher GB (1956) Identification of 5–hydroxytryptamine in the sting of the nettle Urtica dioica. Brit J Pharmacol 11: 186–189
Coulomb C, Coulomb P (1973) Participation des structures golgiennes à la formation des vacuoles autolytiques et à leur approvisionnement enzymatique dans les cellules du méristème radiculaire de la Courge. CR Acad Sei Paris sér D 277: 2685–2688
Dickenson PB, Fairbairn JW (1975) The ultrastructure of the alkaloidal vesicles of Papaver somniferum latex. Ann Bot 39: 707–712
Duchartre P (1859) Recherches physiologiques, anatomiques et organogéniques sur la Colocase des Anciens, Colocasia antiquorum Schott. Ann Sci Nat Bot 12: 272–279
Dumas C (1973 a) Contribution à l’étude cytophysiologique du stigmate. III. Evolution et rôle du réticulum endoplasmique au cours de la sécrétion chez Forsythia intermedia Z; étude cytochimique. Z Pflanzenphysiol 70: 119–130
Dumas C (1973 b) Contribution à l’étude cytophysiologique du stigmate. IV. Réticulum endoplasmique et sécrétion granulocrine chez Forsythia intermedia Z. J Microsc 17: 46 a
Dumas C (1973c) Contribution à l’étude cyto–physiologique du stigmate: essai de caractérisation cytochimique du contenu du réticulum endoplasmique et des grains de sécrétion chez Forsythia intermedia Z. CR Acad Sei Paris sér D 277: 1479–1482
Dumas C (1974 a) Contribution à l’étude cytophysiologique du stigmate. VII. Les vacuoles lipidiques et les associations réticulum endoplasmique–vacuole chez Forsythia intermedia Z. Botaniste 56: 59–80
Dumas C (1974b) Contribution à l’étude cytophysiologique du stigmate. VIII. Les associations réticulum endoplasmique–plastes et la sécrétion stigmatique. Botaniste 56: 81–102
Dumas C (1974 c) Mise en évidence histochimique de la nature essentiellement lipidique de l’exsudat de Forsythia intermedia Z, en microscopies photonique et électronique. Acta Histochem 48:115–123
Dumas C (1975) Le stigmate et la sécrétion stigmatique. Thèse Doct Sci Nat, Université Claude Bernard, Lyon
Dumas C (1977) Lipochemistry of the progamic stage of a self–incompatible species: neutral lipids and fatty acids of the secretory stigma during its glandular activity, and of the solid style, the ovary and the anther in Forsythia intermedia Zab (heterostylic species). Planta 137: 177–184
Dumas C (1978) Stigmates sécréteurs et lipides neutres sécrétés. Soc Bot Fr Actual Bot 1, 2: 61–68 Duve C De (1974) Les lysosomes. Recherche (Paris) 49: 815–826
Esau K, Kosaki H (1975) Laticifers in Nelumbo nucífera Gaertn: Distribution and structure. Ann Bot 39: 713–719
Eymé J (1963) Observations sur les nectaires de trois Renonculacées (Helleborus foetidus L., H. nigerL et Nigella Damascena L.). Botaniste 41: 137–178
Eymé J (1966) Infrastructure des cellules nectarigènes de Diplotaxis erucoides D. C., Helleborus niger L. et H. foetidus L. CR Acad Sci Paris sér 162 D: 1629–1632
Eymé J (1967) Nouvelles observations sur l’infrastructure des tissus nectarigènes floraux. Botaniste 50: 169–183
Fahn A (1953) The topography of the nectary in the flower and its phylogenetic trend. Phytomorphology 3: 424–426
Fahn A, Benayoun J (1976) Ultrastructure of resin ducts in Pinus halepensis. Development, possible sites of resin synthesis, and mode of its elimination from the protoplast. Ann Bot 40: 857–863
Fahn A, Rachmilevitz T (1970) Ultrastructure and nectar secretion in Lonicera japónica. In: New research in plant anatomy, pp 51–56. (Supp to Botanical J of the Linnean Soc 63)
Feldberg W (1950) The mechanism of the sting of common nettle. Brit Sei News 3: 75–77
Frei E (1955) Die Innervierung der floralen Nektarien dicotyler Pflanzenfamilien. Ber Schweiz Bot Ges 65: 60–114
Frey–Wyssling A (1935) Die Stoffausscheidung der höheren Pflanzen. Monographien aus dem Gesamtgebiet der Physiologie der Pflanzen und der Tiere, Band 32. Springer, Berlin
Frey–Wyssling A (1955) The phloem supply to the nectaries. Acta Bot Neerl 4: 358–369
Giaquinta RT (1983) Phloem loading of sucrose. Annu Rev Plant Physiol 34: 347–387
Gifford EM, Stewart KD (1967) Ultrastructure of the shoot apex of Chenopodium album and certain other seed plants. J Cell Biol 33: 131–142
Giordani R (1975) Différenciation des cellules sécrétrices du latex chez l’ Asclepsias curassavica L. et l’ A. Syriaca L. Thèse Doct Spéc Biol Cell, Aix Marseille I I
Giordani R (1977) Dégradation des parois terminales durant la différenciation des laticifères articulés anastomosés de Lactuca sativa L. CR Acad Sci Paris 284 D: 569–572
Giordani R (1978) Autophagic cellulaire et différenciation des laticifères non articulés chez une asclépiade. Biol Cell 33: 253–260
Giordani R (1979) Ultrastructure des laticifères articulés de la Laitue. CR Acad Sci Paris 288 D: 615–618
Giordani R (1980) Dislocation du plasmalemme et libération de vésicules pariétales lors de la dégradation des parois terminales durant la différenciation des laticifères articulés. Biol Cell 38: 231–236
Giordani R (1981 a) Activités hydrolasiques impliquées dans le processus de dégradation pariétale, durant la différenciation des laticifères articulés. Biol Cell 40: 217–224
Giordani R (1981b) Etude comparée de deux types de laticifères: Asclepias curassavica (laticifères non articulés); Lactuca sativa (laticifères articulés). Thèse Doct Sci Univ Aix–Marseille I I
Giordani R, Blasco F, Bertrand JC (1982) Confirmation biochimique de la nature vacuolaire et lysosomal du latex des laticifères non articulés d’ Asclepias curassavica. CR Acad Sci Paris sér III 295: 641–646
Gomori G (1952) Microscopic histochemistry; principles and practices. University of Chicago Press, Chicago
Graham RC, Karnowsky M J (1966) The early stages of injected horseradish peroxidase in the proximal tubules of mouse kidney: ultrastructural cytochemistry by a new technique. J Histochem Cytochem 14: 291–302
Guilliermond A, Mangenot G, Plantefol L (1933) Traité de Cytologie végétale. Le François (ed) Paris
Haberlandt G (1894) Über Bau und Function der Hydathoden. Ber Dtsch Bot Ges 12: 367–378
Haberlandt G (1909) Physiologische Pflanzenanatomie. Engelmann, Leipzig, 650 p. Engl ed: Physiological plant anatomy. Macmillan, London (1914)
Karling JS (1929) The laticiferous system of Achras sapota L. I. A preliminary account of the origin, structure and distribution of the latex vessels in the apical meristem. Am J Bot 16: 803–824
Mahlberg P (1959) Karyokinesis in the non–articulated laticifers of Nerium oleander L. Phytomorphology 9: 110–118
Mahlberg P (1961) Embryogeny and histogenesis in Nerium oleander L. II. Origin and development of the non–articulated laticifers. Am J Bot 48: 90–99
Mahlberg P (1963) Development of non–articulated laticifers in seedling axis of Nerium oleander. Bot Gaz 124: 224–231
Mahlberg P, Sabharwal P (1968) Origin and early development of non–articulated laticifers in embryos of Euphorbia marginata. Am J Bot 55: 375–381
Maillet M (1963) Le réactif au tetroxyde d’osmium–iodure de zinc. Z Mikrosk Anat Forsch (Leipz) 70: 397–425
Mangenot G (1925) Sur le mode de formation des grains d’amidon dans les laticifères des Euphorbiacées. CR Acad Sci Paris 180: 157–160
Mangenot G (1927) Sur la présence de vacuoles spécialisées dans les cellules de certains végétaux. CR Soc Biol Paris 97: 342–345
Mangenot G (1930) Données morphologiques sur la matière vivante. Guillon éd. Paris Marty F (1968 a) Infrastructures des organes sécréteurs de la feuille d’ Urtica urens. CR Acad Sci Paris 266 D: 1712–1714
Marty F (1968 b) Infrastructure des laticifères différenciés d’ Euphorbia characias. CR Acad Sci Paris 267 D: 299–302
Marty F (1970 a) Rôle du système membranaire vacuolaire dans la différenciation des laticifères d’ Euphorbia characias L. CR Acad Sci Paris 271 D: 2301–2304
Marty F (1970 b) Les peroxysomes (microbodies) des laticifères d’ Euphorbia characias L. Une étude morphologique et cytochimique. J Microsc 9: 923–948
Marty F (1971 a) Différenciation des plastes dans les laticifères d’ Euphorbia characias L. CR Acad Sci Paris 272 D: 223–226
Marty F (1971 b) Vésicules autophagiques des laticifères différenciésd’ Euphorbia characias L. CR Acad Sci Paris 272 D: 399–402
Marty F (1973 a) Mise en évidence d’un apparail provacuolaire et de son rôle dans l’autophagie cellulaire et l’origine des vacuoles. CR Acad Sci Paris 276 D: 1549–1552
Marty F (1973 b) Sites réactifs à l’iodure de zinc–tétroxyde d’osmium dans les cellules de la racine d’Euphorbia characias L. CR Acad Sei Paris 277 D: 1317–1320
Marty F (1974) Vacuome et sécrétion intracellulaire chez Euphorbia characias L. Thèse Doct Sci, Université d’Aix–Marseille I I
Marty F (1978) Cytological studies on GERL, pro vacuoles and vacuoles in root meristematic cells of Euphorbia. Proc Natl Acad Sci USA 75: 852–856
Matile P, Jans B, Rickenbacher R (1970) Vacuoles of Chelidonium latex: lysosomal property and accumulation of alkaloids. Biochem Physiol Pflanz (BPP) 161: 447–458
Mika ES (1955) Studies on the growth and development and morphine content of opium poppy. Bot Gaz 116: 323–339
Moens P (1955) Les formations sécrétrices des Copaliers congolais. Etude anatomique, histologique et histogénétique. Cellule 57: 33–64
Molisch H (1901) Studien über den Milchsaft und Schleimsaft der Pflanzen. Fischer, Jena Moor H (1959) Platin–Kohle–Abdruck–Technik angewandt auf Feinbau der Milchröhren. J Ul– trastruet Res 2: 293–422
Morré DJ, Mollenhauer HH (1974) The endomembrane concept: a functional integration of endoplasmic reticulum and Golgi apparatus. In: Robards A (ed) Dynamic aspects of plant ultra– structure. Mc Graw Hill, London
Moyer LS (1937) Recent advances in the physiology of latex. Bot Rev 3: 522–544
Nessler C, Mahlberg P (1979) Plastids in laticifers of Papaver. I. Development and cytochemistry of laticifer plastids in P. somniferum L. ( Papaveraceae ). Am J Bot 66: 266–273
Nieubauer G, Krawczyk WS, Kidd RL, Wilgram GF (1969) Osmium zinc–iodide reactive sites in the epidermal Langerhans cell. J Cell Biol 43: 80–89
Novikoff AB (1964) GERL, its form and functions in neurons of rat spinal ganglia. Biol Bull 127: 358 A
Novikoff AB, Shin WY (1964) The endoplasmic reticulum in the Golgi zone and its relations to microbodies, Golgi apparatus and autophagic vacuoles in rat liver cells. J Microsc 3: 187–206
Perrin A (1972) Contribution à l’étude de l’organisation et du fonctionnement des hydathodes: recherches anatomiques, ultrastructurales et physiologiques. Thèse Doct Sei, Université Cl Bernard, Lyon
Popovici H (1926) Contribution à l’étude cytologique des laticifères. CR Acad Sci Paris 183: 143–145
Pujarniscle S (1971) Etude biochimique des lutoîdes du latex d’ Hevea brasiliensis Müll. Arg. Différences et analogies avec les lysosomes. Mémoire ORSTOM n° 48, Paris
Reynolds ES (1963) The use of lead citrate at high pH as an electron opaque stain in electron microscopy. J Cell Biol 17: 208–212
Ribailler D, Jacob J, d’Auzac J (1971) Sur certains caractères vacuolaires des lutoîdes du latex d’ Hevea brasiliensis Müll. Arg. Physiol Vég 9: 423–437
Ruinen J (1950) Microscopy of the lutoids in Hevea latex. Ann Bogor 1: 27–45
Samat M (1984) Contribution à l’édude du genre Urtica. Thèse Fac Pharmacie, Marseille
Sarkany S, Michels–Nyomarkay K, Venzar–Petri G (1970) Über die histologischen und Feinstrukturellen Beziehungen und in die Frage der Alkaloidbildung im Samen und in die Keimpflanzen von Papaver somniferum L. Pharmazie 10: 625–629
Sassen M (1965) Breakdown of the plant cell wall during the cell fusion process. Acta Bot Neerl 14: 165–196
Savchenko NL (1940) Entwicklung und Anordung des Milchsaftgefäßsystems bei Taraxacum kok–saghyz. Dokl Akad Nauk SSSR 27: 1052–1055
Schaffstein G (1932) Untersuchungen an ungeglierten Milchföhren. Bot Centralbl Beih 49: 197–220
Schnepf E (1969) Sekretion und Exkretion bei Pflanzen. Protoplasmatologia 8
Scott D (1882) The development of articulated latieiferous vessels. QJ Microsc Sei 22: 136–153
Shimony C, Fahn A (1968) Light and electron–microscopical studies on the structure of salt glands of Tamarix aphylla L. J Linn Soc Lond Bot 60 (383): 283–288
Shimony C, Fahn A, Reinhold L (1973) Ultrastructure and ion–gradients in the salt glands of Avicenna marina ( Forsok) Vierh. New Phytol 72: 27–36
Smaoui A (1971) Différenciation des trichomes chez Atriplex halimus L. CR Acad Sei Paris 273 D: 1268–1271
Smaoui A (1975) Les trichomes vésiculeux d’ Atriplex halimus L.–Modalités de sécrétion saline d’une plante halophile. Thèse spécialité, Aix–Marseille I I
Sperlich A (1939) Das trophische Parenchym. B. Exkretionsgewebe. In: Linsbauer, Handbuch der Pflanzenanatomie, Band 4, Lief 38 Borntraeger Berl
Stahl E (1953) Untersuchungen an den Drüsenhaaren der Schafgarbe (Achillea millefolium L.) Z Bot 41: 123–146
Thiéry JP (1967) Mise en évidence des polysaccharides sur coupes fines en microscopie électronique. J Microsc 6: 987–1018
Thureson–Klein A (1970) Observations of the development and fine structure of the articulated laticifers of Papaver somniferum. Ann Bot 34: 751–759
Thurston EL (1974) Morphology, fine structure and ontogeny of the stinging emergence of Urtica dioica. Am J Bot 61: 809–817
Treub M (1880) Sur des cellules végétales à plusieurs noyaux. Arch Neerl Sci 15: 39–69
Vermeer J, Peterson RL (1979) Glandular trichomes on the inflorescence of Chrysanthemum morifolium c.v. Dramatic. (Compositae). II.–Ultrastructure and histochemistry. Can J Bot 57: 714–729
Vertrees G, Mahlberg P (1978) Structure and ontogeny of laticifers in Cichorium intybus ( Compositae ). Am J Bot 65: 764–771
Vian B, Roland JC (1972) Différenciation des cytomembranes et renouvellement du plasmalemme dans les phénomènes de sécrétions végétales. J Microsc 13: 119–136
Vischer W (1923) Über die Konstanz anatomischer und physiologischer Eigenschaften von Hevea brasiliensis Müll. Arg. (Euphorbiaceae). Verh Naturforsch Ges Basel 35: 174–185
Werker E, Fahn A (1981) Secretory hairs of Inula viscosa (L.) Ait. Development, ultrastructure and secretion. Bot Gaz 142: 461–476
Whaley WG, Kephart JE, Mollenhauer HH (1964) The dynamics of cytoplasmic membranes during development. In: M. Locke (ed) Cellular membranes in development. Academic Press, London, pp 135–173
Wilson K, Nessler C, Mahlberg P (1976) Pectinase in Asclepias latex and its possible role in laticifer growth and development. Am J Bot 63: 1140–1144
Wilson KJ, Mahlberg PG (1978) Ultrastructure of non–articulated laticifers in mature embryos and seedlings of Asclepias Syriaca L. ( Asclepiadaceae ). Am J Bot 65: 98–109
Zander A (1928) Über Verlauf und Entstehung der Milchröhren des Hanfes (Cannabis sativa). Flora 23: 191–218
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