Die Erfassung von Bodentiergemeinschaften: Die Variabilität beim Einblick in ein undurchsichtiges, heterogenes Medium

  • Klemens Ekschmitt
  • Broder Breckling

Zusammenfassung

Die Organismen sind der Erfassung ihrer Lebenszusammenhänge unterschiedlich gut zugänglich. Die ökologischen Informationen, die wir über sie gewinnen können, sind weitgehend geprägt durch unsere Möglichkeiten, die Organismen zu beobachten. Hier gibt es erhebliche Unterschiede zwischen verschiedenen Organismengruppen: Pflanzen lassen sich immer wieder aufsuchen. Sie können zu verschiedenen Zeiten erneut untersucht werden; über die Identität der jeweiligen Individuen gibt es bei entsprechender Datenaufnahme keinen Zweifel. Die Methoden der Vegetationskunde und die Aussagen, die sie treffen kann, basieren in entscheidendem Umfang auf der guten Beobachtbarkeit, die mit der Ortsgebundenheit ihrer Objekte zusammenhängt. In der Zoologie dagegen haben wir es überwiegend mit beweglichen Organismen zu tun. Deswegen ist die Beobachtbarkeit oft erheblich eingeschränkt. Aber auch hier gibt es ausgeprägte Unterschiede. Während beispielsweise revierbildende Brutvögel trotz ihrer hohen Mobilität bei geeignetem Vorgehen ganztägig beobachtet werden können, sind im Boden lebende Organismen viel schwieriger zu erfassen. Schon Organismen wie Maulwürfe (die aus der Perspektive der Bodenökologie immerhin zur „Megafauna“ gezählt werden) lassen sich hinsichtlich ihrer Lebenstätigkeiten meist nur indirekt bzw. nur mit großem technischen Aufwand in ihrem Lebensraum unter Freilandbedingungen beobachten. Für die Bodenfauna im allgemeinen gelten Einschränkungen in noch verstärktem Umfang.

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Literatur

  1. Barber HS (1931) Traps for cave-inhabiting insects. J. Elisha Mitchell Sci Soc 46:259–266Google Scholar
  2. Been TH, Schomaker CH (1996) A new sampling method for the detection of low population densities of potato cyst nematodes (Globodera pallida and G-rostochiensis). Crop Protection 4:375–382CrossRefGoogle Scholar
  3. Dibbern I (1994) Vergleichende Untersuchungen zur räumlichen Heterogenität boden-und vegetationskundlicher Variabilitäten in einem Waldökosystem der Bornhöveder Seenkette. Universität Kiel, Geographisches Institut (Diplomarbeit)Google Scholar
  4. Dietrick EJ (1961) An improved back pack motor fan for suction sampling of insect populations. J Econ Ent 54:394–395Google Scholar
  5. Duffey E (1980) The efficiency of the Dietrick vacuum sampler (D-Vac) for invertebrate population studies in different types of grassland. Bull Soc Ecol (Fr.) 11:421–431Google Scholar
  6. Dunger W, Fiedler H (1989) Methoden der Bodenbiologie. G. Fischer, StuttgartGoogle Scholar
  7. Ekschmitt K (1993) Richtwerte für die Datenqualität von bodenzoologischen Freilanderhebungen. Verh Ges Ökol 22:451–456Google Scholar
  8. Ekschmitt K (1998) Population assessments of soil fauna: General criteria for the planning of sampling schemes. Applied Soil Ecology 9:439–445CrossRefGoogle Scholar
  9. Ekschmitt K, Breckling B, Mathes K (1996) Unsicherheit und Ungewißheit bei der Erfassung und Prognose von Ökosystementwicklungen. Verhandlungen der Gesellschaft für Ökologie 26:495–500Google Scholar
  10. Ekschmitt K, Weidemann G, Wolters V (1997) Spatial heterogeneity in the density of soil animals. Recent Research Developments in Soil Biology and Biochemistry 1:21–38Google Scholar
  11. Heydemann B (1956) Über die Bedeutung der Formalinfallen für die zoologische Landesforschung. Faun Mitt Norddeutschland 1:19–24Google Scholar
  12. Kempson D, Lloyd M, Ghelardi J (1963) A new extractor for woodland litter. Pedobiologia 3:1–21Google Scholar
  13. Leitungsgremium des FE Vorhabens (Hrsg) 1992: Okosystemforschung im Bereich der Bornhöveder Seenkette. Arbeitsbericht 1988–1991. Ecosys 1:1–338Google Scholar
  14. MacFadyen A (1953) Notes on methods for the extraction of small soil arthropods. J Anim Ecol 22:65–77CrossRefGoogle Scholar
  15. Müller F (1998) Gradients in ecological systems. Ecological Modelling 108:3–21CrossRefGoogle Scholar
  16. Murphy PW (Hrsg) (1962) Progress in Soil Zoology. Butterworths, LondonGoogle Scholar
  17. Phillipson J (1971) Methods of study in quantitative soil ecology: population, production and energy flow. IBP handbook No 18. Blackwell, OxfordGoogle Scholar
  18. Reiche EW, Dibbern I (1996) Analyse räumlicher Musterbildungen an Beispiel des Stoffbestandes und der floristischen Ausstattung in einem Buchenwaldökosystem. Verh Ges ökol 26:471–478Google Scholar
  19. Serfling RJ (1975) A general Poisson approximation theorem. Ann Prob 3:726–731CrossRefGoogle Scholar
  20. Southwood TRE (1978) Ecological methods - with particular reference to the study of insect populations. 2nd Ed. Chapman & Hall, LondonGoogle Scholar
  21. Topping CJ, Sunderland KD (1994) Methods for quantifying spider density and migration in cereal crops. Bull Br Arachnol Soc 9:209–213Google Scholar

Copyright information

© Springer-Verlag Berlin Heidelberg 1999

Authors and Affiliations

  • Klemens Ekschmitt
  • Broder Breckling

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