Apidologie

, Volume 38, Issue 6, pp 534–544 | Cite as

Acaricide residues in honey and wax after treatment of honey bee colonies with Apivar® or Asuntol®50

  • Anne-Claire Martel
  • Sarah Zeggane
  • Clément Aurières
  • Patrick Drajnudel
  • Jean-Paul Faucon
  • Michel Aubert
Original Article

Abstract

Acaricide residues were assessed in French commercial beeswax using newly developed liquid and gas chromatography methods. Most of the commercial wax samples and all samples taken during the industrial recycling process contained coumaphos and fluvalinate. Amitraz and coumaphos residue levels were also followed in several hives experimentally treated with Asuntol®50 or Apivar®, two products used in France to control varroa infestation. After the Asuntol®50 treatment, coumaphos residues increased in honey and wax combs, persisted more than 30 days in honey and one year or more in comb wax. The half-life of coumaphos was 69 and 115–346 days in honey and comb wax respectively. Following Apivar® treatment, amitraz was not detected in honey nor in wax. These results are consistent with and complete other studies: the use of coumaphos entails wax contamination which persists through commercial recycling. As this may be a threat for bee health, the use of Asuntol®50 should be avoided.

honey beeswax acaricide residue contamination 

Résidus d’acaricides dans le miel et la cire après traitement des colonies d’abeilles à l’Apivar® ou à l’Asuntol®50

miel cire abeille résidu acaricide contamination 

Akarizid-Rückstände in Honig und Bienenwachs nach der Behandlung von Bienenvölkern mit Apivar® oder Asuntol®50

Zusammenfassung

Zur Bekämpfung der Varroamilbe werden in Frankreich die Akarizide Amitraz, Fluvalinat und Coumaphos eingesetzt. Offiziell zugelassen ist dafür Apivar® (Amitraz). Perizin® (Coumaphos) hatte diesen Status bis 2005, wurde aber nie in den Handel gebracht. Seit einigen Jahren verwenden viele Imker Asuntol®50 (Coumaphos). Dieses Tierarzneimittel hat keine Zulassung für die Anwendung in Bienenvölkern. Diese Bestandsaufnahme soll eine Übersicht über die Akarizid-Belastung von Handelswachs in Frankreich geben. In Zusammenarbeit mit der Bienenwachs verarbeitenden Industrie wurden auch Proben vor und nach dem Umarbeitungsprozess von Altwaben untersucht.

Bei zwei Völkergruppen mit je 5 Bienenvölkern wurde darüber hinaus die Rückstandsentwicklung von Amitraz und Coumaphos in Wachs und Honig nach der Anwendung von Apivar® (2 Streifen pro Volk, Anwendungsdauer 10 Wochen) bzw. Asuntol® (10 g einer Mischung Asuntol®50 / Puderzucker 15:500) verfolgt.

Für die geplanten Untersuchungen wurden spezifische HPLC- und GC-Methoden entwickelt. Coumaphos und Fluvalinat konnten in 89 % bzw. 70 % der Handelswachsproben (n = 47) mit Rückstandsgehalten von 0,27–5,81 mg.kg−1 bzw. 0,13–3,62 mg.kg−1 nachgewiesen werden.

Sämtliche Proben, die während der Umarbeitungsphase von Altwaben gezogen wurden, waren mit Coumaphos und Fluvalinat belastet.

Nach Apivar®—Behandlung wurden Amitraz-Rückstände im zentralen Bereich der beiden Waben gefunden, die 24 Stunden lang Kontakt zu den Streifen hatten. In der Folgezeit konnte der Wirkstoff in keiner anderen Probe des Bienenvolkes (Wachs der peripheren Waben und im Honig) nachgewiesen werden. Nach Asuntol®50-Behandlung nahmen die Coumaphos-Rückstände im Bienenvolk zu. Der Wirkstoff war im Honig mehr als 30 Tage und im Wabenwachs über 1 Jahr lang nachweisbar. Einen Tag nach der letzten Asuntol®50-Anwendung lag die durchschnittliche Coumaphosbelastung im Wachs bei 16,1 mg.kg−1 und erreichte nach 26 Tage einen Wert von 6.9 mg.kg−1. Die Halbwertszeit von Coumaphos lag im Honig bei 69 und im Wachs bei 115–346 Tagen.

Diese Ergebnisse bestätigen bzw. vervollständigen die Ergebnisse vorangegangener Studien. Die Verwendung von Coumaphos führt zu einer lang anhaltenden Kontamination des Bienenwachses. Die hohe Persistenz des Wirkstoffs führt im Rahmen der industriellen Umarbeitung von Altwaben zu kontaminierten Mittelwänden, die mitverantwortlich dafür sind, dass Coumaphos-Rückstände auch in Imkereien gefunden werden, in denen der Wirkstoff nicht zum Einsatz gekommen ist.

Da eine negative Wirkung dieser Rückstände auf die Gesundheit der Bienenvölker nicht ausgeschlossen werden kann, sollte auf eine Asuntol®50-Anwendung verzichtet werden.

Honig Wachs Akarizide Rückstände Kontamination 

Preview

Unable to display preview. Download preview PDF.

Unable to display preview. Download preview PDF.

References

  1. Berzas Nevado J.J., Mahedero M.C., Olibares J.A., Salinas F. (1990) Determination of amitraz in honey by first-derivative spectrophotometry, Int. J. Environ. Anal. Chem. 43, 187–194.Google Scholar
  2. Bogdanov S., Kilchenmann V., Imdorf A. (1998) Acaricide residues in some bee products, J. Apic. Res. 37, 57–67.Google Scholar
  3. Darchen R. (1980) La cire, son recyclage et son rôle probable à l’intérieur d’une colonie d’Apis mellifica, Apidologie 11, 193–202.CrossRefGoogle Scholar
  4. Directive 91/414/EEC modified by Directive 96/46/CE [online] http://eur-lex.europa.eu/LexUriServ/Lex-UriServ.do?uri=CELEX:31996L0046:FR:HTML (accessed on 19 September 2007) and Explanatory Note EEC/844/87, European Union, Brussels.Google Scholar
  5. Elzen P.J., Eischen F.A., Baxter J.B., Pettis J., Elzen G.W., Wilson W.T. (1998) Fluvalinate resistance in Varroa jacobsoni from several geographic locations, Am. Bee J. 138, 674–676.Google Scholar
  6. Faucon J.P., Drajnudel P., Fléché C. (1995) Mise en évidence d’une diminution de l’efficacité de l’Apistan® utilisé contre la varroase de l’abeille (Apis mellifera L), Apidologie 26, 291–296.CrossRefGoogle Scholar
  7. Kochansky J., Wilzer K., Feldlaufer M. (2001) Comparison of the transfer of coumaphos from beeswax into syrup and honey, Apidologie 32, 119–125.CrossRefGoogle Scholar
  8. Korta E., Bakkali A., Berrueta L.A., Gallo B., Vicente F., Kilchenmann V., Bogdanov S. (2001) Study of acaricide stability in honey. Characterization of amitraz degradation products in honey and beeswax, J. Agric. Food Chem. 49, 5835–5842.PubMedCrossRefGoogle Scholar
  9. Lodesani M., Pellacani A., Bergomi S., Carpana E., Rabitti T., Lasagni P. (1992) Residue determination for some products used against varroa infestation in bees, Apidologie 23, 257–272.CrossRefGoogle Scholar
  10. Martel A.C., Zeggane S. (2002) Determination of acaricides in honey by high-performance liquid chromatography with photodiode array detection, J. Chromatogr. A 954, 173–180.PubMedCrossRefGoogle Scholar
  11. Pettis J.S., Collins A.M., Wilbanks R., Feldlaufer M.F (2004) Effects of coumaphos on queen rearing in the honey bee, Apis mellifera, Apidologie 35, 605–610.CrossRefGoogle Scholar
  12. Regulations (EC) No. 1931/99 of 09/09/99 Commission for coumaphos [online] http://eurlex.europa.eu/LexUriServ/site/fr/oj/1999/l_240/l_24019990910fr00030010.pdf (accessed on 19 September 2007) and (EC) No. 1836/97 of 24/09/97 Commission for amitraz, European Union, Brussels [online] http://eur-lex.europa.eu/-LexUriServ/LexUriServ.do?uri=CELEX:31997R 1836:FR:HTML (accessed on 19 September 2007).Google Scholar
  13. Thrasyvoulou A.T., Pappas N. (1988) Contamination of honey and wax with malathion and coumaphos used against the varroa mite, J. Apic. Res. 27, 55–61.Google Scholar
  14. Tremolada P., Bernardinelli I., Colombo M., Spreafico M., Vighi M. (2004) Coumaphos distribution in the hive ecosystem: case study for modelling applications, Ecotoxicology 13, 589–601.PubMedCrossRefGoogle Scholar
  15. Van Buren N.W.M., Marien J., Velthuis H.H.W., Oudejans R.C.H.M. (1992) Residues in beeswax and honey of Perizin, an acaricide to combat the mite Varroa jacobsoni Oudemans (Acari: Mesostigmata), Environ. Entomol. 21, 860–865.Google Scholar
  16. Van Rillaer W., Beernaert H. (1989) Determination of residual bromopropylate and coumaphos in honey and honeycomb by capillary gas chromatography, Z. Lebensm. Unters. Forsch. 188, 135–137.PubMedCrossRefGoogle Scholar
  17. Wallner K. (1992) Diffusion varroazider Wirkstoffe aus dem Wachs in den Honig, Apidologie 23, 323–389.CrossRefGoogle Scholar
  18. Wallner K. (1999) Varroacides and their residues in bee products, Apidologie 30, 235–248.CrossRefGoogle Scholar

Copyright information

© INRA, EDP Sciences 2007

Authors and Affiliations

  • Anne-Claire Martel
    • 1
  • Sarah Zeggane
    • 1
  • Clément Aurières
    • 1
  • Patrick Drajnudel
    • 1
  • Jean-Paul Faucon
    • 1
  • Michel Aubert
    • 1
  1. 1.Unité de Pathologie de l’AbeilleAgence Française de Sécurité Sanitaire des Aliments (AFSSA), Site de Sophia Antipolis, Laboratoire d’Études et de Recherches sur les Petits Ruminants et les Abeilles (LERPRA)Sophia Antipolis CedexFrance

Personalised recommendations