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Das Kulturmedium als entscheidender Faktor für die Embryoqualität

Culture Medium as a Decisive Factor for Embryo Quality

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Gynäkologie in der Praxis Aims and scope

Zusammenfassung

Einleitung

Die Wahl des Embryokulturmediums ist essenziell für den Erfolg der reproduktionsmedizinischen Behandlung. Jüngere Forschungsergebnisse zeigen, dass eine Reduktion des metabolischen Stresses für den Embryo die Schwangerschaftsraten erhöhen könnte. Dieser metabolische Stress kann durch höhere Laktatkonzentrationen im Kulturmedium ausgelöst werden. In der vorliegenden Studie sollen daher die Nutzungsraten für Embryonen kultiviert in Medien mit niedrigem Laktatgehalt untersucht werden.

Methoden

In dieser prospektiven Studie wurden 428 Embryonen von Patientinnen (18–41 Jahre) nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion (ICSI) eingeschlossen. Dabei wurden nur Patientinnen mit ≥ 6 reifen Eizellen (MII) inkludiert. 211 Embryonen wurden mit G‑TLTM (Vitrolife, Göteborg, Schweden) und 217 mit dem laktatreduzierten Medium CSCM (Fujifilm, Irvine Scientific, Santa Ana, CA, USA) inkubiert. Die Embryonen wurden unter konstanten Bedingungen in einem Time-lapse-System kultiviert (Embryoscope+, Vitrolife). Die Embryonutzungsrate wurde an Tag 3 und Tag 5 analysiert.

Resultate

Die Anzahl der befruchteten Eizellen lag bei 211 in G‑TLTM versus 217 im CSCM-Kulturmedium. Die Gesamtnutzungsrate lag bei 64,3 % nach Verwendung von CSCM im Vergleich zu 52 % mit G‑TLTM (p < 0,008). In den Altersgruppen zeigte sich eine erhöhte Gesamtnutzungsrate in allen Altersgruppen (18–30, 31–35, 36–41). Eine Subgruppenanalyse von Tag-5/6-Embryonen zeigte eine Nutzungsrate von 58,1 % mit CSCM versus 43,1 % mit G‑TLTM (p < 0,007). Weiters konnte ein schwacher Trend für höhere Schwangerschafts- und Lebendgeburtenraten bei Embryonen kultiviert in CSCM-Medium festgestellt werden.

Schlussfolgerung

Die Daten zeigen eine deutlich verbesserte Nutzungsrate bei der Verwendung des CSCM-Kulturmediums. Eine übermäßige Laktatkonzentration in Kulturmedien könnte den Stoffwechsel des Embryos negativ beeinflussen. Dies wäre vor allem im Blastozystenstadium von besonderer Bedeutung, wenn der Glukoseverbrauch des Embryos, sowie die Laktatproduktion zunimmt und sich dadurch mehr Laktat im Kulturmedium ansammelt.

Abstract

Objective

Choosing the right culture media in artificial reproductive technology (ART) cycles is a constant challenge for embryologists and physicians. Recently, minimizing metabolic stress for the embryo to enhance pregnancy rates has been suggested. Research on the metabolism of mammalian preimplantation embryos revealed that higher concentrations of lactate might be responsible for disturbing embryo metabolism. Hence, this study aims to evaluate the utilization rates for embryos cultured in low lactate media.

Materials and methods

This prospective study included women aged 18–41 undergoing intracytoplasmic sperm injection (ICSI) with ≥ six mature (MII) oocytes. Oocytes from each patient were split equally at the time of insemination into the two media types: standard G‑TLTM (Vitrolife) and low lactate CSCM (Fujifilm) with mineral-oil (Gynemed) overlay and cultured in Embryoscope+ (Vitrolife). A total of 428 embryos were obtained. The utilization rates (embryo transfer or cryopreservation) of day 3 and day 5/6 embryos were analyzed.

Results

The number of achieved fertilized oocytes was 211 in G‑TLTM and 217 in CSCM. Overall, the utilization rate was 64.3% using CSCM media compared to 52% in the G‑TLTM group (p < 0,008). Additionally, the utilization rate of day 5 embryos was 58.1% using CSCM versus 43.1% with G‑TLTM (p < 0.007). Interestingly, age stratification (18–30, 31–35, 36–41) revealed higher total and day 5/6 utilization rates when using CSCM media in all age groups. In addition, a slight trend for higher pregnancy and live birth rates was observed for embryos cultured in CSCM media.

Conclusions

The data show a significantly improved blastocyst utilization rate with CSCM media. It is tempting to speculate that an excess concentration of lactate in culture media might negatively influence embryo metabolism. This could be of particular significance during blastocyst stage when embryo glucose consumption increases as well as lactate production, accumulating in the culture media.

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Literatur

  1. Inhorn MC, Patrizio P (2015) Infertility around the globe: new thinking on gender, reproductive technologies and global movements in the 21st century. Hum Reprod Update 21(4):411–426

    Article  PubMed  Google Scholar 

  2. Wunder D, Ballabeni P, Roth-Kleiner M, Primi MP, Senn A, Chanson A et al (2014) Effect of embryo culture media on birthweight and length in singleton term infants after IVF-ICSI. Swiss Med Wkly 144:w14038

    PubMed  Google Scholar 

  3. Kleijkers SHM, Eijssen LMT, Coonen E, Derhaag JG, Mantikou E, Jonker MJ et al (2015) Differences in gene expression profiles between human preimplantation embryos cultured in two different IVF culture media. Hum Reprod 30(10):2303–2311

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  4. Dumoulin JC, Land JA, Van Montfoort AP, Nelissen EC, Coonen E, Derhaag JG et al (2010) Effect of in vitro culture of human embryos on birthweight of newborns. Hum Reprod 25(3):605–612

    Article  PubMed  Google Scholar 

  5. Tarahomi M, Vaz FM, van Straalen JP, van Schrauwen a. Wely Hamer FPMG et al (2019) The composition of human preimplantation embryo culture media and their stability during storage and culture. Hum Reprod 34(8):1450–1461

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  6. Morbeck DE, Krisher RL, Herrick JR, Baumann NA, Matern D, Moyer T (2014) Composition of commercial media used for human embryo culture. Fertil Steril 102(3):759.e9–766.e9

    Article  Google Scholar 

  7. Kleijkers SHM, van Montfoort APA, Bekers O, Coonen E, Derhaag JG, Evers JLH et al (2016) Ammonium accumulation in commercially available embryo culture media and protein supplements during storage at 2–8 °C and during incubation at 37 °C. Hum Reprod 31(6):1192–1199

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  8. Costa-Borges N, Bellés M, Meseguer M, Galliano D, Ballesteros A, Calderón G (2016) Blastocyst development in single medium with or without renewal on day 3: a prospective cohort study on sibling donor oocytes in a time-lapse incubator. Fertil Steril 105(3):707–713

    Article  PubMed  Google Scholar 

  9. Ginsberg L, Hillman N (1975) Shifts in ATP synthesis during preimplantation stages of mouse embryos. J Reprod Fertil 43(1):83–90

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  10. Biggers JD, Whittingham DG, Donahue RP (1967) The pattern of energy metabolism in the mouse oöcyte and zygote. Proc Natl Acad Sci U S A 58(2):560–567

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  11. Johnson MT, Freeman EA, Gardner DK, Hunt PA (2007) Oxidative metabolism of pyruvate is required for meiotic maturation of murine oocytes in vivo. Biol Reprod 77(1):2–8

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  12. Gardner DK (2011) Embryo metabolism and in vitro culture. In: Poncelet C, Sifer C (Hrsg) Physiologie, pathologie et thérapie de la reproduction chez l’humain. Springer, Paris, S 511–519 https://doi.org/10.1007/978-2-8178-0061-5_46

    Chapter  Google Scholar 

  13. Lewis, Sturmey. Periodikos (2015) Embryo metabolism: what does it really mean? http://www.animal-reproduction.org/article/5b5a6033f7783717068b4616

  14. Dumollard R, Ward Z, Carroll J, Duchen MR (2007) Regulation of redox metabolism in the mouse oocyte and embryo. Development 134(3):455–465

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  15. Lane M, Gardner DK (2000) Lactate regulates pyruvate uptake and metabolism in the preimplantation mouse embryo. Biol Reprod 62(1):16–22

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  16. VB J, Pw D, J L (1995) ATP content of human oocytes and developmental potential and outcome after in-vitro fertilization and embryo transfer. Human reproduction (Oxford, England). https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/7769073/

  17. Kilani S, Cooke S, Tilia L, Chapman M (2011) Does meiotic spindle normality predict improved blastocyst development, implantation and live birth rates? Fertil Steril 96(2):389–393

    Article  PubMed  Google Scholar 

  18. Hardy K, Hooper MA, Handyside AH, Rutherford AJ, Winston RM, Leese HJ (1989) Non-invasive measurement of glucose and pyruvate uptake by individual human oocytes and preimplantation embryos. Hum Reprod 4(2):188–191

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  19. VerMilyea M, Rios C, Maizar AA, James RM, Picou A, Werland HJ et al (2018) Stress relief: can continuous culture in a low lactate culture media reduce numerical chromosomal abnormalities and therefore improve euploidy rates? Fertil Steril 1(110):e361–e362

    Article  Google Scholar 

  20. Hereng TH, Elgstøen KBP, Cederkvist FH, Eide L, Jahnsen T, Skålhegg BS et al (2011) Exogenous pyruvate accelerates glycolysis and promotes capacitation in human spermatozoa. Hum Reprod 26(12):3249–3263

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  21. Zhang X, Wu XQ, Lu S, Guo YL, Ma X (2006) Deficit of mitochondria-derived ATP during oxidative stress impairs mouse MII oocyte spindles. Cell Res 16(10):841–850

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  22. Urich M, Ugur MR, Li F, Shamma FN, Hammoud A, Cottrell HN et al (2022) Comparison of two culture media on morphokinetics and ploidy status of sibling embryos. Zygote 30(3):410–415

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  23. Kobanawa M (2022) Fertilization, embryo culture, and clinical results using low lactate embryo culture medium for pre-culture, insemination, and beyond. Reprod Med Biol 21(1):e12458

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  24. Abdala A, Elkhatib I, Bayram A, Arnanz A, El-Damen A, Melado L et al (2022) Day 5 vs day 6 single euploid blastocyst frozen embryo transfers: which variables do have an impact on the clinical pregnancy rates? J Assist Reprod Genet 39(2):379–388

    Article  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

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Weiss, G., Serrano Comes, C. Das Kulturmedium als entscheidender Faktor für die Embryoqualität. Gynäkol. Prax. (2024). https://doi.org/10.1007/s41974-024-00314-0

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