Skip to main content
SpringerLink
Log in

Optimierte IgG-Antikörper-Diagnostik der exogen-allergischen Alveolitis und pulmonaler Mykosen mittels neu evaluierter Spannweiten und Häufigkeiten der IgG-Antikörper im ImmunoCAPTM

  • Original
  • Published:
Allergo Journal Aims and scope Submit manuscript

Zusammenfassung

Hintergrund: Bei den meisten immunologischen pulmonalen Lungenkrankheiten mit IgG-Antikörpern gegen aviäre, mikrobielle und chemische Antigene sind die Bereiche, innerhalb derer die Antikörperwerte oberhalb der Cutoffs im IgG-ImmunoCAP™ variieren, die sogenannten Spannweiten, nicht bekannt. Darüber hinaus ist für viele Antigene noch nicht untersucht, wie häufig ihre IgG-Antikörper im ImmunoCAP™ bei Patienten mit diesen Lungenkrankheiten auftreten. Deshalb haben wir die Spannweiten und Häufigkeiten solcher IgG-Antikörper im IgG-ImmunoCAP™ evaluiert.

Methoden: 47.200 Seren von Patienten mit Verdacht auf eine exogen-allergische Alveolitis (EAA; Hypersensitivitätspneumonitis) oder eine pulmonale Mykose wurden auf 32 verschiedene IgG-Antikörper gegen Vögel, Bakterien, Schimmelpilze, Hefen und Chemikalien mit dem IgG-ImmunoCAP™-Test (Thermo Fisher Diagnostics, Freiburg, Deutschland) untersucht und retrospektiv ausgewertet.

Ergebnisse: Wir fanden große Unterschiede bei den Spannweiten der IgG-Antikörper mit Maximalwerten von 26 mgA/l für Mucor racemosus bis zu 4.640 mgA/l für Taube. Berücksichtigt man zusätzlich die Höchstwerte der Spannweiten aus der Literatur, so erreichen die Vogelantikörper Werte bis zu 7.280 mgA/l, die Schimmelpilze und Hefen Werte bis zu 1.707 mgA/l, die bakteriellen Thermoactinomyceten bis zu 206 mgA/l und die Chemikalien bis zu 139 mgA/l. Die ermittelten Spannweiten der Antikörper zwischen den jeweiligen Cutoff-Werten und den Maximalwerten der einzelnen Antigene können herangezogen werden, um zu entscheiden, ob ein nachgewiesener IgG-Antikörperwert schwach, mäßig oder stark positiv ist. Nach übereinstimmenden Angaben von zahlreichen Studien weist ein stark positiver IgG-Antikörper eher auf eine EAA oder eine pulmonale Mykose hin als ein schwach positiver IgG-Antikörper. Zudem zeigte sich, dass die Antigene mit den höchsten Werten - Taube, Wellensittich, Papagei und Aspergillus fumigatus - die Verursacher der häufigsten immunvermittelten Lungenerkrankungen sind, nämlich der Vogelhalterlunge und der pulmonalen Aspergillose. Die Auswertung der Häufigkeiten von acht wichtigen IgG-Antikörpern der EAA ergab die folgenden Prozentsätze: Taube 28 %, Aspergillus fumigatus 25 %, Wellensittich 23 %, Penicillium chrysogenum 11 %, Saccharopolyspora rectivirgula 7 %, Acremonium kiliense 6 %, Aureobasidium pullulans 5 % und Thermoactinomyces vulgaris 2 %.

Schlussfolgerung: Diese Studie ist die erste, die die Spannweite nicht nur von Vogel- und Aspergillus-fumigatus-IgG-Antikörper-Messwerten, sondern auch von Antikörperwerten 24 weiterer Umweltantigene evaluiert hat. Die Quantifizierung der IgG-Antikörper im Rahmen ihrer spezifischen Spannweiten kann dazu beitragen, die Serodiagnostik von immunvermittelten Lungenkrankheiten zu verbessern. Niedrige IgG-Werte sind überwiegend physiologischer Natur, während höhere Werte mit der EAA und den pulmonalen Mykosen korrelieren. Die zusätzlich ermittelten Häufigkeiten der acht IgG-Antikörper der allergischen Alveolitis können für die Entwicklung von Suchtests der EAA hilfreich sein.

Zitierweise: Sennekamp J, Lehmann E, Joest M. Improved IgG antibody diagnostics of hypersensitivity pneumonitis and pulmonary mycoses by means of newly evaluated serum antibody ranges and frequencies using IgG ImmunoCAP™. Allergo J Int 2022;31:172-82

https://doi.org/10.1007/s40629-022-00208-7

This is a preview of subscription content, log in via an institution to check access.

Access this article

Log in via an institution

Price excludes VAT (USA)
Tax calculation will be finalised during checkout.

Instant access to the full article PDF.

Institutional subscriptions

Abb. 1
Abb. 2

Literatur

  1. Denning DW, Cadranel J, Beigelman-Aubry C, Ader F, Chakrabarti A, Blot S, et al. Chronic pulmonary aspergillosis; rationale and clinical guidelines for diagnosis and management. Eur Respir J 2016;47:45-68

  2. Shirai T, Tanino Y, Nikaido T, Takaku Y, Hashimoto S, Taguchi Y, et al. Screening and diagnosis of acute and chronic bird-related hypersensitivity pneumonitis by serum IgG and IgA antibodies to bird antigens with ImmunoCAP. Allergol Int 2021;70:208-14

  3. Page ID, Richardson M, Denning DW. Antibody testing in aspergillosis—quo vadis? Med Mycol 2015;53:417-39

  4. Richardson MD, Page ID. Aspergillus serology: have we arrived yet? Med Mycol 2017;55:48-55

  5. Sennekamp J, Lehmann E, Joest M. Work related extrinsic allergic alveolitis. ASU Int 2015;50:38-52

  6. Van Hoeyveld E, Dupont L, Bossuyt X. Quantification of IgG antibodies to aspergillus fumigatus and pigeon antigens by ImmunoCAP® technology: an alternative to the precipitation technique? Clin Chem 2006;52:1785-93

  7. McSharry C, Dye GM, Ismail T, Anderson K, Spiers EM, Boyd G. Quantifying serum antibody in bird fanciers' hypersensitivity pneumonitis. BMC Pulm Med 2006;6:16

  8. Lopata AL, Schinkel M, Potter PC, Jeebhay MF, Hashemi C, Johansson SGO, et al. Qualitative and quantitative evaluation of bird-specific IgG antibodies. Int Arch Allergy Immunol 2004;134:173-8

  9. Erkinjuntti-Pekkanen R, Reiman M, Kokkarinen JI, Tukiainen HO, Terho EO. IgG antibodies, chronic bronchitis, and pulmonary function values in farmer's lung patients and matched controls. Allergy 1999;54:1181-7

  10. Lewis C, McSharry C, Anderson K, Speekenbrink A, Kemeny DM, Durnin S, et al. Quantifying serum antibody class and subclass responses by enzyme immunoassay in humidifier-related disease. Clin Exp Allergy 1991;21:601-7

  11. Woge MJ, Ryu JH, Moua T. Diagnostic implications of positive avian serology in suspected hypersensitivity pneumonitis. Respir Med 2017;129:173-8

  12. Khan S, Chowdhury SR, Ghosh S, Sengupta A, Ramasubban S, Sen D. Quantitation of avian IgG antibodies with clinico-radiological tests in the diagnosis of bird fancier's hypersensitivity pneumonitis. Pulmo Face 2015;15:48-54

  13. Fujiuchi S, Fujita H, Suzuki H, Doushita K, Kuroda H, Takahashi M, et al. Evaluation of a quantitative serological assay for diagnosing chronic pulmonary aspergillosis. J Clin Microbiol 2016;54:1496-9

  14. Yu Q, He J,Xing B,Li X,Qian H,Zhang H, et al. Potential value of serum aspergillus IgG antibody detection in invasive and chronic pulmonary aspergillosis. BMC Pulm Med 2020;20:89

  15. Agarwal R, Dua D, Choudhary H, Aggarwal AN, Sehgal IS, Dhooria S, et al. Role of Aspergillus fumigatus-specific IgG in diagnosis andmonitoring treatment response in allergic bronchopulmonary aspergillosis. Mycoses 2017;60:33-9

  16. Kränke B, Woltsche M, Woltsche-Kahr I, Aberer W. IgG-Antikörper gegen EAA-spezifische Umweltantigene. Allergologie 2001;24:145-54

  17. Tan YH, Ngan CCL, Huang SW, Loo CM, Low SY. Specific serum immunoglobulin G (IgG) levels against antigens implicated in hypersensitivity pneumonitis in asymptomatic individuals. Ann Acad Med Singap 2019;48:36-8

  18. Makkonen K, Viitala KI, Parkkila S, Niemelä O. Serum IgG and IgE antibodies against mold-derivedantigens in patiens with symptoms of hypersensitivity. Clin Chim Acta. 2001;305:89-98

  19. Raulf M, Joest M, Sander I, Hoffmeyer F, Nowak D, Ochmann U, et al. Update of reference values for IgG antibodies against typical antigens of hypersensitivity pneumonitis. Allergo J Int 2019;28:192-203

  20. Page ID, Richardson MD, Denning DW. Comparison of six aspergillus specific IgG assays for the diagnosis of chronic pulmonary aspergillosis (CPA). J Infect 2016;72:240-9

  21. Pronk A, Preller L, Raulf-Heimsoth M, et al. Respiratory symptoms, sensitization, and exposure - response relationships in spray painters exposed to isocyanates. Am J Respir Crit Care Med 2007;176:1090-7

  22. Koschel D, Lützkendorf L, Wiedemann B, Höffken G. Antigen-specific IgG antibodies in feather duvet lung. Eur J Clin Invest 2010;40:797-8032

  23. Sennekamp J. Extrinsic allergic alveolitis - hypersensitivity pneumonitis. Munich, Orlando: Dustri-Verlag; 2004

  24. Costabel U, Miyazaki Y, Pardo A, Koschel D, Bonella F, SpagnoloP, et al. Hypersensitivity pneumonitis. Nat Rev Dis Primers 2020;6:65

  25. Chowdhary A, Agarwal K, Kathuria S, Gaur SN, Randhawa HS, Meis JF. Allergic bronchopulmonary mycosis due to fungi other than aspergillus: a global overview. Crit Rev Microbiol 2014;40:30-48

  26. Serrano C, Torrego A, Loosli A, Valero A, Picado C. Hypersensitivity pneumonitis after exposure to Candida spp. Arch Bronconeumol 2010;46:275-7

  27. Gernhold M, Sennekamp J. Exogen-allergische Alveolitis durch Backhefe (Saccharomyces cerevisiae). Allergologie 2010;33:577-80

  28. Baur X, Fischer A, Budnik LT. Spotlight on the diagnosis of extrinsic allergic alveolitis (hypersensitivity pneumonitis). J Occup Med Toxicol 2015;10:15

  29. Schreiber J, Knolle J, Sennekamp J, Schulz KT, Hahn JU, Hering KG, et al. Subacute occupational hypersensitivity pneumonitis due low-level exposure to diisocyanates in a secretary. Eur Respir J. 2008;32:807-11

  30. Liebetrau G, Bergmann KC. Morbiditäts- und Mortalitätszahlen für die exogen-allergische Alveolitis (EAA). Allergologie 1994;17:61-4

  31. Fernández Pérez ER, Swigris JJ, Forssén AV, Tourin O, Solomon JJ, Huie TJ, et al. Identifying an inciting antigen is associated with improved survival in patients with chronic hypersensitivity pneumonitis. Chest 2013;144:1644-51

  32. Joest M, Sennekamp J. Allergische bronchopulmonale Aspergillose (ABPA) und andere allergische bronchopulmonale Mykosen (ABPM). Munich, Orlando: Dustri Verlag; 2020

  33. Denning DW, Pleuvry A, Cole D. Global burden of allergic bronchopulmonary aspergillosis with asthma and its complication chronic pulmonary aspergillosis in adults. Med Mycol 2013;51:361-70

  34. Sennekamp J, Lehmann E. Optimierte IgG-Antikörperdiagnostik der Bettfedern-Alveolitis mittels EAA-Suchtest. Pneumologie 2015;69:638-44

  35. Júnior MC, de Moraes Arantes A, Silva HM, Costa CR, Silva MRR, et al. Acremonium kiliense: case report and review of published studies. Mycopathologia 2013;176:417-21

  36. Eschenhagen P, Grehn C, Schwarz C. Prospective evaluation of aspergillus fumigatus specific IgG in patients with cystic fibrosis. Front Cell Infect Microbiol 2021;10:602836

  37. Brouwer J. Cross-reactivity between aspergillus fumigatus and penicillium. Int Arch Allergy Immunol 1996;110:166-73

  38. Vojdani A. Cross-reactivity of aspergillus, penicillium, and stachybotrys antigens using affinity-purified antibodies and immunoassay. Arch Environ Health 2004;59:256-65

  39. Richardson JP, Moyes DL. Adaptive immune responses to Candida albicans infections. Virulence 2015;6:327-37

  40. Huertas B, Prieto D, Pitarch A, Gil C, Pla J, Díez-Orejas R et al. Serum antibody profile during colonization of the mouse gut by Candida albicans. J Proteome Res 2017;15:335-45

  41. Petnak T, Moua T. Exposure assessment in hypersensitivity pneumonitis: a comprehensive review and proposed screening questionnaire. ERJ Open Re 2020;6:230-2020

  42. Quirce S, Vandenplas O, Campo P, Cruz MJ, de Blay F, Koschel D, et al. Occupational hypersensitivity pneumonitis: an EAACI position paper. Allergy 2016;71:765-79

  43. Samson MH, Vestergaard JM, Knudsen CS, Kolstad HA. Serum levels of IgG antibodies against aspergillus fumigatus and the risk of hypersensitivity pneumonitis and other interstitial lung diseases. Scand J Clin Lab Invest 2021;81:451-3

  44. Barton RC, Hobson RP, Denton M, Peckham D, Brownlee K, Conway S, et al. Serologic diagnosis of allergic bronchopulmonary aspergillosis in patients with cystic fibrosis through the detection of immunoglobulin G to aspergillus fumigatus. Diagn Microbiol Infect Dis 2008;62:287-91

Download references

Danksagung

Wir danken Sabine Schmidt, Brigitte Hüneke, Manuela Schmitz-Gerhardt, Carolin Bonk und Barbara Kläge für die perfekten Analysen der IgG-Antikörper.

Author information

Authors and Affiliations

  1. Malteser Lungen- und Allergiezentrum Bonn, Weberstr. 118, 53113, Bonn, Germany

    Joachim Sennekamp

  2. Institute for Medical Humanities, Universität Bonn, Bonn, Germany

    Emilia Lehmann

  3. Lungen- und Allergiezentrum Bonn, Bonn, Germany

    Marcus Joest

Authors
  1. Joachim Sennekamp
    View author publications

    You can also search for this author in PubMed Google Scholar

  2. Emilia Lehmann
    View author publications

    You can also search for this author in PubMed Google Scholar

  3. Marcus Joest
    View author publications

    You can also search for this author in PubMed Google Scholar

Ethics declarations

J. Sennekamp, E. Lehmann und M. Joest erklären, dass keine Interessenkonflikte bestehen.

Rights and permissions

Reprints and permissions

About this article

Check for updates. Verify currency and authenticity via CrossMark

Cite this article

Sennekamp, J., Lehmann, E. & Joest, M. Optimierte IgG-Antikörper-Diagnostik der exogen-allergischen Alveolitis und pulmonaler Mykosen mittels neu evaluierter Spannweiten und Häufigkeiten der IgG-Antikörper im ImmunoCAPTM. Allergo J 31, 52–63 (2022). https://doi.org/10.1007/s15007-022-5085-9

Download citation

  • Published:

  • Issue Date:

  • DOI: https://doi.org/10.1007/s15007-022-5085-9

Schlüsselwörter

Search

Navigation