Skip to main content
Log in

Pterygium: Pathogenese, Diagnose und Therapie

Pterygium: pathogenesis, diagnosis and treatment

  • CME
  • Published:
Der Ophthalmologe Aims and scope Submit manuscript

A Leserbriefe to this article was published on 20 September 2021

A Leserbriefe to this article was published on 31 May 2021

An Erratum to this article was published on 11 May 2021

This article has been updated

Zusammenfassung

Das Pterygium ist eine häufige, durch Ultraviolett(UV)-Licht induzierte, fokale fibrovaskuläre Proliferation konjunktivalen Gewebes auf die Hornhaut. Bei Visusminderung, fortschreitender Astigmatismusbildung, drohender Invasion in die optische Achse sowie bei Oberflächenbeschwerden sollte eine chirurgische Exzision angestrebt werden. Die Hauptfaktoren der Rezidivprophylaxe umfassen die optimale chirurgische Therapie durch eine Exzision mit Deckung durch eine freies Bindehauttransplantat, eine konsequente postoperative Therapie mit konservierungsmittelfreien Tränenersatzmitteln und topischen Steroiden sowie eine langfristige UV-Protektion.

Abstract

The pterygium is a frequent ultraviolet (UV) light-induced focal fibrovascular proliferation of the conjunctival tissue onto the cornea. Surgical excision should be performed in the case of reduced visual acuity, progressive astigmatism, impending invasion of the optical axis and ocular surface complaints. The main factors in preventing recurrence include optimal surgical treatment by an excision combined with a free conjunctival autograft, consistent postoperative treatment with preservative-free artificial tears and topical steroids as well as long-term UV protection.

This is a preview of subscription content, log in via an institution to check access.

Access this article

Price excludes VAT (USA)
Tax calculation will be finalised during checkout.

Instant access to the full article PDF.

Abb. 1
Abb. 2
Abb. 3
Abb. 4
Abb. 5
Abb. 6
Abb. 7
Abb. 8
Abb. 9
Abb. 10
Abb. 11

Change history

Literatur

  1. Droutsas K, Sekundo W (2010) Epidemiology of pterygium. A review. Ophthalmologe 107(6):511–516. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2101-3

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  2. Bradley JC, Yang W, Bradley RH et al (2010) The science of pterygia. Br J Ophthalmol 94(7):815–820. https://doi.org/10.1136/bjo.2008.151852

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  3. Chui J, Di Girolamo N, Wakefield D et al (2008) The pathogenesis of pterygium: current concepts and their therapeutic implications. Ocul Surf 6(1):24–43. https://doi.org/10.1016/s1542-0124(12)70103-9

    Article  PubMed  Google Scholar 

  4. Heindl LM, Cursiefen C (2010) Pterygium. Etiology, clinical aspects and novel adjuvant therapies. Ophthalmologe 107(6):517–524. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2100-4

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  5. Sekundo W (2010) Pterygium. Ophthalmologe 107(6):509–510. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2098-7

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  6. Mackenzie FD, Hirst LW, Battistutta D et al (1992) Risk analysis in the development of pterygia. Ophthalmology 99(7):1056–1061. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(92)31850-0

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  7. Moran DJ, Hollows FC (1984) Pterygium and ultraviolet radiation: a positive correlation. Br J Ophthalmol 68(5):343–346. https://doi.org/10.1136/bjo.68.5.343

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  8. Di Girolamo N, Chui J, Coroneo MT et al (2004) Pathogenesis of pterygia: role of cytokines, growth factors, and matrix metalloproteinases. Prog Retin Eye Res 23(2):195–228. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2004.02.002

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  9. Liu L, Wu J, Geng J et al (2013) Geographical prevalence and risk factors for pterygium: a systematic review and meta-analysis. BMJ Open 3(11):e3787. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2013-003787

    Article  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  10. Coroneo MT (1993) Pterygium as an early indicator of ultraviolet insolation: a hypothesis. Br J Ophthalmol 77(11):734–739. https://doi.org/10.1136/bjo.77.11.734

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  11. Lim R, Mitchell P, Cumming RG (1998) Cataract associations with pinguecula and pterygium: the Blue Mountains Eye Study. Am J Ophthalmol 126(5):717–719. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(98)00140-8

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  12. Norn MS (1979) Prevalence of pinguecula in Greenland and in Copenhagen, and its relation to pterygium and spheroid degeneration. Acta Ophthalmol (Copenh) 57(1):96–105. https://doi.org/10.1111/j.1755-3768.1979.tb06664.x

    Article  CAS  Google Scholar 

  13. Pham TQ, Wang JJ, Rochtchina E et al (2005) Pterygium/pinguecula and the five-year incidence of age-related maculopathy. Am J Ophthalmol 139(3):536–537. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2004.08.070

    Article  PubMed  Google Scholar 

  14. Notara M, Behboudifard S, Kluth MA et al (2018) UV light-blocking contact lenses protect against short-term UVB-induced limbal stem cell niche damage and inflammation. Sci Rep 8(1):12564. https://doi.org/10.1038/s41598-018-30021-8

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  15. Notara M, Lentzsch A, Coroneo M et al (2018) The role of limbal epithelial stem cells in regulating corneal (lymph)angiogenic privilege and the micromilieu of the limbal niche following UV exposure. Stem Cells Int 2018:8620172. https://doi.org/10.1155/2018/8620172

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  16. Notara M, Refaian N, Braun G et al (2015) Short-term uvb-irradiation leads to putative limbal stem cell damage and niche cell-mediated upregulation of macrophage recruiting cytokines. Stem Cell Res 15(3):643–654. https://doi.org/10.1016/j.scr.2015.10.008

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  17. Hirst LW, Axelsen RA, Schwab I (2009) Pterygium and associated ocular surface squamous neoplasia. Arch Ophthalmol 127(1):31–32. https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2008.531

    Article  PubMed  Google Scholar 

  18. Hirst LW (2003) The treatment of pterygium. Surv Ophthalmol 48(2):145–180. https://doi.org/10.1016/s0039-6257(02)00463-0

    Article  PubMed  Google Scholar 

  19. Wanzeler ACV, Barbosa IAF, Duarte B et al (2019) Impact of pterygium on the ocular surface and meibomian glands. PLoS One 14(9):e213956. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0213956

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  20. Wolter-Roessler E, Seitz B, Naumann GO (2002) Pterygoid corneal dystrophy. Klin Monbl Augenheilkd 219(9):677–681. https://doi.org/10.1055/s-2002-35166

    Article  PubMed  Google Scholar 

  21. Maheshwari S (2007) Pterygium-induced corneal refractive changes. Indian J Ophthalmol 55(5):383–386. https://doi.org/10.4103/0301-4738.33829

    Article  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  22. Tan DT, Chee SP, Dear KB et al (1997) Effect of pterygium morphology on pterygium recurrence in a controlled trial comparing conjunctival autografting with bare sclera excision. Arch Ophthalmol 115(10):1235–1240. https://doi.org/10.1001/archopht.1997.01100160405001

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  23. Verma N, Garap JA, Maris R et al (1998) Intraoperative use of mitomycin C in the treatment of recurrent pterygium. P N G Med J 41(1):37–42

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  24. Eisenmann K, Zeman F, Helbig H et al (2020) Outcome of pterygium excision after various surgical techniques-is excision with simple conjunctival closure still lege artis? Ophthalmologe 117(4):359–365. https://doi.org/10.1007/s00347-019-00968-8

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  25. Eisenmann K, Zeman F, Helbig H et al (2020) Should mitomycin C be used routinely in pterygium surgery? Ophthalmologe 117(4):367–368. https://doi.org/10.1007/s00347-019-01009-0

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  26. Forbes J, Collin R, Dart J (1998) Split thickness buccal mucous membrane grafts and beta irradiation in the treatment of recurrent pterygium. Br J Ophthalmol 82(12):1420–1423. https://doi.org/10.1136/bjo.82.12.1420

    Article  CAS  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  27. Crewe JM, Threlfall T, Clark A et al (2018) Pterygia are indicators of an increased risk of developing cutaneous melanomas. Br J Ophthalmol 102(4):496–501. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2017-310686

    Article  PubMed  Google Scholar 

  28. Sekundo W, Droutsas K, Cursiefen C (2010) Operative techniques for surgical treatment of primary and recurrent pterygia. Ophthalmologe 107(6):525–528. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2099-6

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  29. Soriano JM, Janknecht P, Witschel H (1993) Effect of pterygium operation on preoperative astigmatism. Prospective study. Ophthalmologe 90(6):688–690

    CAS  PubMed  Google Scholar 

  30. Kim SW, Park S, Im CY et al (2014) Prediction of mean corneal power change after pterygium excision. Cornea 33(2):148–153. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000036

    Article  PubMed  Google Scholar 

  31. Caccavale A, Romanazzi F, Imparato M et al (2010) Ropivacaine for topical anesthesia in pterygium surgery with fibrin glue for conjunctival autograft. Cornea 29(4):375–376. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181ba7061

    Article  PubMed  Google Scholar 

  32. D’Ombrain A (1948) The surgical treatment of pterygium. Br J Ophthalmol 32(2):65–71. https://doi.org/10.1136/bjo.32.2.65

    Article  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  33. Yanyali AC, Talu H, Alp BN et al (2000) Intraoperative mitomycin C in the treatment of pterygium. Cornea 19(4):471–473. https://doi.org/10.1097/00003226-200007000-00013

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  34. Alpay A, Ugurbas SH, Erdogan B (2009) Comparing techniques for pterygium surgery. Clin Ophthalmol 3:69–74

    PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  35. Ang LP, Chua JL, Tan DT (2007) Current concepts and techniques in pterygium treatment. Curr Opin Ophthalmol 18(4):308–313. https://doi.org/10.1097/ICU.0b013e3281a7ecbb

    Article  PubMed  Google Scholar 

  36. Clearfield E, Muthappan V, Wang X et al (2016) Conjunctival autograft for pterygium. Cochrane Database Syst Rev 2:CD11349. https://doi.org/10.1002/14651858.CD011349.pub2

    Article  PubMed  Google Scholar 

  37. Kenyon KR, Wagoner MD, Hettinger ME (1985) Conjunctival autograft transplantation for advanced and recurrent pterygium. Ophthalmology 92(11):1461–1470. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(85)33831-9

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  38. Por YM, Tan DT (2010) Assessment of fibrin glue in pterygium surgery. Cornea 29(1):1–4. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181a38fda

    Article  PubMed  Google Scholar 

  39. Srinivasan S, Dollin M, Mcallum P et al (2009) Fibrin glue versus sutures for attaching the conjunctival autograft in pterygium surgery: a prospective observer masked clinical trial. Br J Ophthalmol 93(2):215–218. https://doi.org/10.1136/bjo.2008.145516

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  40. Maiti R, Mukherjee S, Hota D (2017) Recurrence rate and graft stability with fibrin glue compared with suture and autologous blood coagulum for conjunctival autograft adherence in pterygium surgery: a meta-analysis. Cornea 36(10):1285–1294. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000001270

    Article  PubMed  Google Scholar 

  41. Gris O, Guell JL, del Campo Z (2000) Limbal-conjunctival autograft transplantation for the treatment of recurrent pterygium. Ophthalmology 107(2):270–273. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(99)00041-x

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  42. Masters JS, Harris DJ Jr. (2015) Low recurrence rate of pterygium after excision with conjunctival limbal autograft: a retrospective study with long-term follow-up. Cornea 34(12):1569–1572. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000597

    Article  PubMed  Google Scholar 

  43. Kucukerdonmez C, Akova YA, Altinors DD (2007) Comparison of conjunctival autograft with amniotic membrane transplantation for pterygium surgery: surgical and cosmetic outcome. Cornea 26(4):407–413. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318033b3d4

    Article  PubMed  Google Scholar 

  44. Das S, Ramamurthy B, Sangwan VS (2009) Deep lamellar keratoplasty for recurrent advanced pterygium. Ophthalmic Surg Lasers Imaging 40(1):43–45. https://doi.org/10.3928/15428877-20090101-06

    Article  PubMed  Google Scholar 

  45. Sul S, Korkmaz S, Novruzlu S (2014) Seasonal effects on pterygium surgery outcome: implications for the role of sunlight exposure. Cornea 33(5):504–506. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000097

    Article  PubMed  Google Scholar 

  46. dos Santos Paris F, de Farias CC, Melo GB et al (2008) Postoperative subconjunctival corticosteroid injection to prevent pterygium recurrence. Cornea 27(4):406–410. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318162af90

    Article  Google Scholar 

  47. Kampitak K, Leelawongtawun W, Leeamornsiri S et al (2017) Role of artificial tears in reducing the recurrence of pterygium after surgery: a prospective randomized controlled trial. Acta Ophthalmol 95(3):e227–e229. https://doi.org/10.1111/aos.13176

    Article  PubMed  Google Scholar 

  48. Gebhardt M, Mentlein R, Schaudig U et al (2005) Differential expression of vascular endothelial growth factor implies the limbal origin of pterygia. Ophthalmology 112(6):1023–1030. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2005.01.023

    Article  PubMed  Google Scholar 

  49. Bahar I, Kaiserman I, Mcallum P et al (2008) Subconjunctival bevacizumab injection for corneal neovascularization in recurrent pterygium. Curr Eye Res 33(1):23–28. https://doi.org/10.1080/02713680701799101

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

  50. Wu PC, Kuo HK, Tai MH et al (2009) Topical bevacizumab eyedrops for limbal-conjunctival neovascularization in impending recurrent pterygium. Cornea 28(1):103–104. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181822615

    Article  PubMed  Google Scholar 

  51. Hos D, Le VNH, Hellmich M et al (2019) Risk of corneal graft rejection after high-risk keratoplasty following fine-needle vessel coagulation of corneal neovascularization combined with bevacizumab: a pilot study. Transplant Direct 5(5):e452. https://doi.org/10.1097/TXD.0000000000000894

    Article  PubMed  PubMed Central  Google Scholar 

  52. Fossarello M, Peiretti E, Zucca I et al (2004) Photodynamic therapy of pterygium with verteporfin: a preliminary report. Cornea 23(4):330–338. https://doi.org/10.1097/00003226-200405000-00004

    Article  PubMed  Google Scholar 

  53. Young AL, Tam PM, Leung GY et al (2009) Prospective study on the safety and efficacy of combined conjunctival rotational autograft with intraoperative 0.02 % mitomycin C in primary pterygium excision. Cornea 28(2):166–169. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318187544d

    Article  PubMed  Google Scholar 

  54. dos Santos Martins TG, Anschutz A (2020) The use of mitomycin C in pterygium surgery. Ophthalmologe 117(4):366. https://doi.org/10.1007/s00347-019-01008-1

    Article  PubMed  Google Scholar 

  55. Rubinfeld RS, Pfister RR, Stein RM et al (1992) Serious complications of topical mitomycin‑C after pterygium surgery. Ophthalmology 99(11):1647–1654. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(92)31749-x

    Article  CAS  PubMed  Google Scholar 

Download references

Förderung

DFG-Forschungsgruppe FOR 2240 – Augenklinik, Uniklinik Köln (www.for2240.de), Zentrum für Molekulare Medizin, Köln (ZMMK; https://www.cmmc-uni-koeln.de/research/research-areas-projects/research-area-a/maria-notara-claus-cursiefen-a-09).

Author information

Authors and Affiliations

Authors

Corresponding author

Correspondence to Alexander C. Rokohl.

Ethics declarations

Interessenkonflikt

Gemäß den Richtlinien des Springer Medizin Verlags werden Autoren und Wissenschaftliche Leitung im Rahmen der Manuskripterstellung und Manuskriptfreigabe aufgefordert, eine vollständige Erklärung zu ihren finanziellen und nichtfinanziellen Interessen abzugeben.

Autoren

A. C. Rokohl: A. Finanzielle Interessen: A. C. Rokohl gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Wissenschaftlicher Mitarbeiter im ärztlichen Dienst, Zentrum für Augenheilkunde, Uniklinik Köln | Mitgliedschaften: Deutsche Opthalmologische Gesellschaft (DOG), ESOPRS. L. M. Heindl: A. Finanzielle Interessen: L. M. Heindl gibt an, dass kein finanzieller Interessenkonflikt besteht. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Universitätsprofessor, Oberarzt, Zentrum für Augenheilkunde, Universität zu Köln | Mitgliedschaften: DOG, Berufsverband der Augenärzte Deutschlands (BVA), Association for Resaearch in Vision and Ophthalmology (ARVO). C. Cursiefen: A. Finanzielle Interessen: Forschungsförderung zur persönlichen Verfügung: DFG(Deutsche Forschungsgemeinschaft)-Förderung FOR 2240, CMMC(Zentrum für Molekulare Medizin der Universität Köln)-Förderung, Universität zu Köln. – B. Nichtfinanzielle Interessen: Direktor des Zentrums für Augenheilkunde, Direktor der Klinik und Poliklinik für Allgemeine Augenheilkunde, Uniklinik Köln | Mitgliedschaften und Funktionen (unentgeltliche Mitarbeit): Visiting Professor, Adjunct Associate Scientist, Harvard Medical School, Schepens Eye Research Institute, Boston, USA; Visiting Professor, Tongji University Shanghai, China; Vorstand der Sektion Kornea der DOG, München; Gesamtpräsidium, geschäftsführendes Präsidium, Präsident und Vizepräsident der DOG, München; Nationale Akademie der Wissenschaften Leopoldina, Halle; Fellow, ARVO, Bethesda, USA; Fachkollegiat Ophthalmologie der DFG, Bonn; Senat der Universität zu Köln; CIO der Universitäten Köln und Bonn; geschäftsführender Vorstand, CMMC; Bundesärztekammer (BÄK), Berlin, Arbeitskreis Augenhornhautbanken; Vorsitzender, Streilein Foundation Europe, Köln; Bundesverband Auge, Nürnberg; Sprecher der DFG-Forschergruppe FOR 2240 (www.for2240.de); PI Horizon 2020 ARREST BLINDNESS; Action Chair EU COST BM1302 (www.biocornea.eu); Action Vice-Chair COST Aniridia (www.aniridia-net.eu); Herausgeber, Section Editor, Beirat: Der Ophthalmologe, Klinische Monatsblätter für Augenheilkunde, CORNEA, Ophthalmic Research, Investigative Ophthalmology and Visual Sciences, Zeitschrift für praktische Augenheilkunde; Gutachter: DFG, DOG, ERC, Belgian Research Fund, Dutch Ophthalmic Research Fund etc.; Leitung, Task Force Research, DOG, München; Ehrenvorsitzender, Förderverein Forschung für das Sehen Köln; Member, Steering Board, European Vision Institute, Brüssel, Belgien; BVA; ARVO; American Academy of Ophthalmology (AAO); European Association for Vision and Eye Research (EVER); Arbeitsgemeinschaft Deutscher Hornhautbanken; The Cornea Society; European Society of Cataract and Refractive Surgeons (ESCRS); EuCornea.

Wissenschaftliche Leitung

Die vollständige Erklärung zum Interessenkonflikt der Wissenschaftlichen Leitung finden Sie am Kurs der zertifizierten Fortbildung auf www.springermedizin.de/cme.

Der Verlag

erklärt, dass für die Publikation dieser CME-Fortbildung keine Sponsorengelder an den Verlag fließen.

Für diesen Beitrag wurden von den Autoren keine Studien an Menschen oder Tieren durchgeführt. Für die aufgeführten Studien gelten die jeweils dort angegebenen ethischen Richtlinien.

Additional information

Wissenschaftliche Leitung

F. Grehn, Würzburg

Unter ständiger Mitarbeit von:

H. Helbig, Regensburg

W.A. Lagrèze, Freiburg

U. Pleyer, Berlin

B. Seitz, Homburg/Saar

Die Originalversion dieses Beitrags wurde korrigiert: In dem ursprünglichen Artikel wurden die Erläuterungen zu den Teilabbildungen der Abb. 9 sowie der Abb. 11 falsch zugeordnet.

Supplementary Information

Video: Operative Schritte der Pterygiumresektion mit Bindehautdeckung durch Naht; Copyright: Dr. med. Alexander C. Rokohl, Köln

CME-Fragebogen

CME-Fragebogen

Was gilt als Hauptrisikofaktor des Pterygiums?

Ultraviolette Strahlung

Bakterielle Infektion mit Chlamydien

Infektion mit Coronaviren

Weibliches Geschlecht

Familiäre Vorbelastung

Mit welchem okulären Tumor scheint eine Komorbidität zu bestehen?

Bindehautpapillom

Ziliarkörpermelanom

Pingueculum

Konjunktivales Melanom

Nävus von Ota

Welche histologische Beschreibung trifft für das Pterygium zu?

Teilweise sind bei einem Pterygium histopathologische Merkmale einer chronischen Entzündung wie einer lymphozytären Infiltration zu erkennen, zusätzlich elastoide Degeneration und Gefäßproliferation.

Histologisch zeigen sich bei einem Pterygium meist ein verhornendes Epithel sowie eine Proliferation von Becherzellen.

Subepithelial dominieren bei einem Pterygium atrophische Kollagenfasern, wenige Gefäßanschnitte sowie elastoide Hypertrophien.

Im Korpus des Pterygiums zeigt sich keine Entzündung, und es kann in der Regel nicht abgehoben werden.

Das Pterygium zeigt Zeichen einer akuten Entzündung mit einer Hyperplasie von Kollagenfasern und wenigen Gefäßen.

Welche diagnostische Maßnahme gehört in der Regel zum standardisierten Untersuchungsablauf bei einem Pterygium?

Spaltlampenmikroskopische Untersuchung mit Fotodokumentation des Befunds

Farbsehtest

Motilitätstestung an der Harms-Wand

Magnetreonanztomographie der Orbita

Untersuchung der Makula mit der optischen Koheränztomographie

Der spaltlampenmikroskopische Befund eines Pterygium zeigt in der Regel …

eine fokale, meist triangulär geformte, fibrovaskuläre Proliferation des konjunktivalen Gewebes auf die Hornhaut.

eine diffuse Trübung der Hornhaut.

eine diffuse gelbliche Prominenz der Konjunktiva.

eine fokale lachsfarbene Prominenz der Bindehaut.

eine fokale, stark pigmentierte und prominente Raumforderung der Bindehaut.

Welche topischen Medikamente sollten nach Pterygiumexzision zur postoperativen Rezidivprophylaxe angewendet werden?

Kombination aus Tränenersatzmittel und Steroiden

Kombination aus Tränenersatzmittel und Antibiotika

Kombination aus Steroiden und Voriconazol

Kombination aus Steroiden und Aciclovir

Kombination aus Antibiotika und Aciclovir

Welche Diagnose stellt keine Operationsindikation dar?

Visusminderung

Massive Oberflächenbeschwerden, die zu einem massiv trockenen Auge führen

Fortschreitende Astigmatismusbildung

Drohende Invasion in die optische Achse

Gelegentliches Fremdkörpergefühl

Welches operative Vorgehen hat die geringste Rezidivrate nach Exzision eines Pterygiums?

Resektion des Pterygiums, kombiniert mit freiem Bindehautstransplantat sowie, nach Abwägung aller Risiken, mit einer intraoperativen Applikation von Antimetaboliten

Resektion des Pterygiums mit einer Deckung durch Amnion

Resektion des Pterygiums mit direktem Wundverschluss

Resektion des Pterygiums ohne Wundverschluss

Resektion des Pterygiums mit einer Deckung durch Mundschleimhaut

Welche adjuvante Therapie kann zur Senkung des Rezidivsrisikos angewendet werden?

Intraoperativ appliziertes Mitomycin C

Intraoperativ applizierte Betablocker

Postoperative Anwendung von Brimonidin

Neoadjuvante Bestrahlung des Operationsgebiets mit Utraviolett(UV)-Licht

Adjuvante Gabe von Prostaglandinen

Was ist eine typische Nebenwirkung von topisch appliziertem Mitomycin C?

Farbveränderungen der Iris

Katarakt

Skleraverdickung

Proliferation von Endothelzellen

Ziliarkörperhyperplasie

Rights and permissions

Reprints and permissions

About this article

Check for updates. Verify currency and authenticity via CrossMark

Cite this article

Rokohl, A.C., Heindl, L.M. & Cursiefen, C. Pterygium: Pathogenese, Diagnose und Therapie. Ophthalmologe 118, 749–763 (2021). https://doi.org/10.1007/s00347-021-01366-9

Download citation

  • Accepted:

  • Published:

  • Issue Date:

  • DOI: https://doi.org/10.1007/s00347-021-01366-9

Schlüsselwörter

Keywords

Navigation