Zusammenfassung
Das Pterygium ist eine häufige, durch Ultraviolett(UV)-Licht induzierte, fokale fibrovaskuläre Proliferation konjunktivalen Gewebes auf die Hornhaut. Bei Visusminderung, fortschreitender Astigmatismusbildung, drohender Invasion in die optische Achse sowie bei Oberflächenbeschwerden sollte eine chirurgische Exzision angestrebt werden. Die Hauptfaktoren der Rezidivprophylaxe umfassen die optimale chirurgische Therapie durch eine Exzision mit Deckung durch eine freies Bindehauttransplantat, eine konsequente postoperative Therapie mit konservierungsmittelfreien Tränenersatzmitteln und topischen Steroiden sowie eine langfristige UV-Protektion.
Abstract
The pterygium is a frequent ultraviolet (UV) light-induced focal fibrovascular proliferation of the conjunctival tissue onto the cornea. Surgical excision should be performed in the case of reduced visual acuity, progressive astigmatism, impending invasion of the optical axis and ocular surface complaints. The main factors in preventing recurrence include optimal surgical treatment by an excision combined with a free conjunctival autograft, consistent postoperative treatment with preservative-free artificial tears and topical steroids as well as long-term UV protection.
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11 May 2021
Zu diesem Beitrag wurde ein Erratum veröffentlicht: https://doi.org/10.1007/s00347-021-01396-3
Literatur
Droutsas K, Sekundo W (2010) Epidemiology of pterygium. A review. Ophthalmologe 107(6):511–516. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2101-3
Bradley JC, Yang W, Bradley RH et al (2010) The science of pterygia. Br J Ophthalmol 94(7):815–820. https://doi.org/10.1136/bjo.2008.151852
Chui J, Di Girolamo N, Wakefield D et al (2008) The pathogenesis of pterygium: current concepts and their therapeutic implications. Ocul Surf 6(1):24–43. https://doi.org/10.1016/s1542-0124(12)70103-9
Heindl LM, Cursiefen C (2010) Pterygium. Etiology, clinical aspects and novel adjuvant therapies. Ophthalmologe 107(6):517–524. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2100-4
Sekundo W (2010) Pterygium. Ophthalmologe 107(6):509–510. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2098-7
Mackenzie FD, Hirst LW, Battistutta D et al (1992) Risk analysis in the development of pterygia. Ophthalmology 99(7):1056–1061. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(92)31850-0
Moran DJ, Hollows FC (1984) Pterygium and ultraviolet radiation: a positive correlation. Br J Ophthalmol 68(5):343–346. https://doi.org/10.1136/bjo.68.5.343
Di Girolamo N, Chui J, Coroneo MT et al (2004) Pathogenesis of pterygia: role of cytokines, growth factors, and matrix metalloproteinases. Prog Retin Eye Res 23(2):195–228. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2004.02.002
Liu L, Wu J, Geng J et al (2013) Geographical prevalence and risk factors for pterygium: a systematic review and meta-analysis. BMJ Open 3(11):e3787. https://doi.org/10.1136/bmjopen-2013-003787
Coroneo MT (1993) Pterygium as an early indicator of ultraviolet insolation: a hypothesis. Br J Ophthalmol 77(11):734–739. https://doi.org/10.1136/bjo.77.11.734
Lim R, Mitchell P, Cumming RG (1998) Cataract associations with pinguecula and pterygium: the Blue Mountains Eye Study. Am J Ophthalmol 126(5):717–719. https://doi.org/10.1016/s0002-9394(98)00140-8
Norn MS (1979) Prevalence of pinguecula in Greenland and in Copenhagen, and its relation to pterygium and spheroid degeneration. Acta Ophthalmol (Copenh) 57(1):96–105. https://doi.org/10.1111/j.1755-3768.1979.tb06664.x
Pham TQ, Wang JJ, Rochtchina E et al (2005) Pterygium/pinguecula and the five-year incidence of age-related maculopathy. Am J Ophthalmol 139(3):536–537. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2004.08.070
Notara M, Behboudifard S, Kluth MA et al (2018) UV light-blocking contact lenses protect against short-term UVB-induced limbal stem cell niche damage and inflammation. Sci Rep 8(1):12564. https://doi.org/10.1038/s41598-018-30021-8
Notara M, Lentzsch A, Coroneo M et al (2018) The role of limbal epithelial stem cells in regulating corneal (lymph)angiogenic privilege and the micromilieu of the limbal niche following UV exposure. Stem Cells Int 2018:8620172. https://doi.org/10.1155/2018/8620172
Notara M, Refaian N, Braun G et al (2015) Short-term uvb-irradiation leads to putative limbal stem cell damage and niche cell-mediated upregulation of macrophage recruiting cytokines. Stem Cell Res 15(3):643–654. https://doi.org/10.1016/j.scr.2015.10.008
Hirst LW, Axelsen RA, Schwab I (2009) Pterygium and associated ocular surface squamous neoplasia. Arch Ophthalmol 127(1):31–32. https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2008.531
Hirst LW (2003) The treatment of pterygium. Surv Ophthalmol 48(2):145–180. https://doi.org/10.1016/s0039-6257(02)00463-0
Wanzeler ACV, Barbosa IAF, Duarte B et al (2019) Impact of pterygium on the ocular surface and meibomian glands. PLoS One 14(9):e213956. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0213956
Wolter-Roessler E, Seitz B, Naumann GO (2002) Pterygoid corneal dystrophy. Klin Monbl Augenheilkd 219(9):677–681. https://doi.org/10.1055/s-2002-35166
Maheshwari S (2007) Pterygium-induced corneal refractive changes. Indian J Ophthalmol 55(5):383–386. https://doi.org/10.4103/0301-4738.33829
Tan DT, Chee SP, Dear KB et al (1997) Effect of pterygium morphology on pterygium recurrence in a controlled trial comparing conjunctival autografting with bare sclera excision. Arch Ophthalmol 115(10):1235–1240. https://doi.org/10.1001/archopht.1997.01100160405001
Verma N, Garap JA, Maris R et al (1998) Intraoperative use of mitomycin C in the treatment of recurrent pterygium. P N G Med J 41(1):37–42
Eisenmann K, Zeman F, Helbig H et al (2020) Outcome of pterygium excision after various surgical techniques-is excision with simple conjunctival closure still lege artis? Ophthalmologe 117(4):359–365. https://doi.org/10.1007/s00347-019-00968-8
Eisenmann K, Zeman F, Helbig H et al (2020) Should mitomycin C be used routinely in pterygium surgery? Ophthalmologe 117(4):367–368. https://doi.org/10.1007/s00347-019-01009-0
Forbes J, Collin R, Dart J (1998) Split thickness buccal mucous membrane grafts and beta irradiation in the treatment of recurrent pterygium. Br J Ophthalmol 82(12):1420–1423. https://doi.org/10.1136/bjo.82.12.1420
Crewe JM, Threlfall T, Clark A et al (2018) Pterygia are indicators of an increased risk of developing cutaneous melanomas. Br J Ophthalmol 102(4):496–501. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2017-310686
Sekundo W, Droutsas K, Cursiefen C (2010) Operative techniques for surgical treatment of primary and recurrent pterygia. Ophthalmologe 107(6):525–528. https://doi.org/10.1007/s00347-009-2099-6
Soriano JM, Janknecht P, Witschel H (1993) Effect of pterygium operation on preoperative astigmatism. Prospective study. Ophthalmologe 90(6):688–690
Kim SW, Park S, Im CY et al (2014) Prediction of mean corneal power change after pterygium excision. Cornea 33(2):148–153. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000036
Caccavale A, Romanazzi F, Imparato M et al (2010) Ropivacaine for topical anesthesia in pterygium surgery with fibrin glue for conjunctival autograft. Cornea 29(4):375–376. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181ba7061
D’Ombrain A (1948) The surgical treatment of pterygium. Br J Ophthalmol 32(2):65–71. https://doi.org/10.1136/bjo.32.2.65
Yanyali AC, Talu H, Alp BN et al (2000) Intraoperative mitomycin C in the treatment of pterygium. Cornea 19(4):471–473. https://doi.org/10.1097/00003226-200007000-00013
Alpay A, Ugurbas SH, Erdogan B (2009) Comparing techniques for pterygium surgery. Clin Ophthalmol 3:69–74
Ang LP, Chua JL, Tan DT (2007) Current concepts and techniques in pterygium treatment. Curr Opin Ophthalmol 18(4):308–313. https://doi.org/10.1097/ICU.0b013e3281a7ecbb
Clearfield E, Muthappan V, Wang X et al (2016) Conjunctival autograft for pterygium. Cochrane Database Syst Rev 2:CD11349. https://doi.org/10.1002/14651858.CD011349.pub2
Kenyon KR, Wagoner MD, Hettinger ME (1985) Conjunctival autograft transplantation for advanced and recurrent pterygium. Ophthalmology 92(11):1461–1470. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(85)33831-9
Por YM, Tan DT (2010) Assessment of fibrin glue in pterygium surgery. Cornea 29(1):1–4. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181a38fda
Srinivasan S, Dollin M, Mcallum P et al (2009) Fibrin glue versus sutures for attaching the conjunctival autograft in pterygium surgery: a prospective observer masked clinical trial. Br J Ophthalmol 93(2):215–218. https://doi.org/10.1136/bjo.2008.145516
Maiti R, Mukherjee S, Hota D (2017) Recurrence rate and graft stability with fibrin glue compared with suture and autologous blood coagulum for conjunctival autograft adherence in pterygium surgery: a meta-analysis. Cornea 36(10):1285–1294. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000001270
Gris O, Guell JL, del Campo Z (2000) Limbal-conjunctival autograft transplantation for the treatment of recurrent pterygium. Ophthalmology 107(2):270–273. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(99)00041-x
Masters JS, Harris DJ Jr. (2015) Low recurrence rate of pterygium after excision with conjunctival limbal autograft: a retrospective study with long-term follow-up. Cornea 34(12):1569–1572. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000597
Kucukerdonmez C, Akova YA, Altinors DD (2007) Comparison of conjunctival autograft with amniotic membrane transplantation for pterygium surgery: surgical and cosmetic outcome. Cornea 26(4):407–413. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318033b3d4
Das S, Ramamurthy B, Sangwan VS (2009) Deep lamellar keratoplasty for recurrent advanced pterygium. Ophthalmic Surg Lasers Imaging 40(1):43–45. https://doi.org/10.3928/15428877-20090101-06
Sul S, Korkmaz S, Novruzlu S (2014) Seasonal effects on pterygium surgery outcome: implications for the role of sunlight exposure. Cornea 33(5):504–506. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000097
dos Santos Paris F, de Farias CC, Melo GB et al (2008) Postoperative subconjunctival corticosteroid injection to prevent pterygium recurrence. Cornea 27(4):406–410. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318162af90
Kampitak K, Leelawongtawun W, Leeamornsiri S et al (2017) Role of artificial tears in reducing the recurrence of pterygium after surgery: a prospective randomized controlled trial. Acta Ophthalmol 95(3):e227–e229. https://doi.org/10.1111/aos.13176
Gebhardt M, Mentlein R, Schaudig U et al (2005) Differential expression of vascular endothelial growth factor implies the limbal origin of pterygia. Ophthalmology 112(6):1023–1030. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2005.01.023
Bahar I, Kaiserman I, Mcallum P et al (2008) Subconjunctival bevacizumab injection for corneal neovascularization in recurrent pterygium. Curr Eye Res 33(1):23–28. https://doi.org/10.1080/02713680701799101
Wu PC, Kuo HK, Tai MH et al (2009) Topical bevacizumab eyedrops for limbal-conjunctival neovascularization in impending recurrent pterygium. Cornea 28(1):103–104. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181822615
Hos D, Le VNH, Hellmich M et al (2019) Risk of corneal graft rejection after high-risk keratoplasty following fine-needle vessel coagulation of corneal neovascularization combined with bevacizumab: a pilot study. Transplant Direct 5(5):e452. https://doi.org/10.1097/TXD.0000000000000894
Fossarello M, Peiretti E, Zucca I et al (2004) Photodynamic therapy of pterygium with verteporfin: a preliminary report. Cornea 23(4):330–338. https://doi.org/10.1097/00003226-200405000-00004
Young AL, Tam PM, Leung GY et al (2009) Prospective study on the safety and efficacy of combined conjunctival rotational autograft with intraoperative 0.02 % mitomycin C in primary pterygium excision. Cornea 28(2):166–169. https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e318187544d
dos Santos Martins TG, Anschutz A (2020) The use of mitomycin C in pterygium surgery. Ophthalmologe 117(4):366. https://doi.org/10.1007/s00347-019-01008-1
Rubinfeld RS, Pfister RR, Stein RM et al (1992) Serious complications of topical mitomycin‑C after pterygium surgery. Ophthalmology 99(11):1647–1654. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(92)31749-x
Förderung
DFG-Forschungsgruppe FOR 2240 – Augenklinik, Uniklinik Köln (www.for2240.de), Zentrum für Molekulare Medizin, Köln (ZMMK; https://www.cmmc-uni-koeln.de/research/research-areas-projects/research-area-a/maria-notara-claus-cursiefen-a-09).
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Die Originalversion dieses Beitrags wurde korrigiert: In dem ursprünglichen Artikel wurden die Erläuterungen zu den Teilabbildungen der Abb. 9 sowie der Abb. 11 falsch zugeordnet.
Supplementary Information
Video: Operative Schritte der Pterygiumresektion mit Bindehautdeckung durch Naht; Copyright: Dr. med. Alexander C. Rokohl, Köln
CME-Fragebogen
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Was gilt als Hauptrisikofaktor des Pterygiums?
Ultraviolette Strahlung
Bakterielle Infektion mit Chlamydien
Infektion mit Coronaviren
Weibliches Geschlecht
Familiäre Vorbelastung
Mit welchem okulären Tumor scheint eine Komorbidität zu bestehen?
Bindehautpapillom
Ziliarkörpermelanom
Pingueculum
Konjunktivales Melanom
Nävus von Ota
Welche histologische Beschreibung trifft für das Pterygium zu?
Teilweise sind bei einem Pterygium histopathologische Merkmale einer chronischen Entzündung wie einer lymphozytären Infiltration zu erkennen, zusätzlich elastoide Degeneration und Gefäßproliferation.
Histologisch zeigen sich bei einem Pterygium meist ein verhornendes Epithel sowie eine Proliferation von Becherzellen.
Subepithelial dominieren bei einem Pterygium atrophische Kollagenfasern, wenige Gefäßanschnitte sowie elastoide Hypertrophien.
Im Korpus des Pterygiums zeigt sich keine Entzündung, und es kann in der Regel nicht abgehoben werden.
Das Pterygium zeigt Zeichen einer akuten Entzündung mit einer Hyperplasie von Kollagenfasern und wenigen Gefäßen.
Welche diagnostische Maßnahme gehört in der Regel zum standardisierten Untersuchungsablauf bei einem Pterygium?
Spaltlampenmikroskopische Untersuchung mit Fotodokumentation des Befunds
Farbsehtest
Motilitätstestung an der Harms-Wand
Magnetreonanztomographie der Orbita
Untersuchung der Makula mit der optischen Koheränztomographie
Der spaltlampenmikroskopische Befund eines Pterygium zeigt in der Regel …
eine fokale, meist triangulär geformte, fibrovaskuläre Proliferation des konjunktivalen Gewebes auf die Hornhaut.
eine diffuse Trübung der Hornhaut.
eine diffuse gelbliche Prominenz der Konjunktiva.
eine fokale lachsfarbene Prominenz der Bindehaut.
eine fokale, stark pigmentierte und prominente Raumforderung der Bindehaut.
Welche topischen Medikamente sollten nach Pterygiumexzision zur postoperativen Rezidivprophylaxe angewendet werden?
Kombination aus Tränenersatzmittel und Steroiden
Kombination aus Tränenersatzmittel und Antibiotika
Kombination aus Steroiden und Voriconazol
Kombination aus Steroiden und Aciclovir
Kombination aus Antibiotika und Aciclovir
Welche Diagnose stellt keine Operationsindikation dar?
Visusminderung
Massive Oberflächenbeschwerden, die zu einem massiv trockenen Auge führen
Fortschreitende Astigmatismusbildung
Drohende Invasion in die optische Achse
Gelegentliches Fremdkörpergefühl
Welches operative Vorgehen hat die geringste Rezidivrate nach Exzision eines Pterygiums?
Resektion des Pterygiums, kombiniert mit freiem Bindehautstransplantat sowie, nach Abwägung aller Risiken, mit einer intraoperativen Applikation von Antimetaboliten
Resektion des Pterygiums mit einer Deckung durch Amnion
Resektion des Pterygiums mit direktem Wundverschluss
Resektion des Pterygiums ohne Wundverschluss
Resektion des Pterygiums mit einer Deckung durch Mundschleimhaut
Welche adjuvante Therapie kann zur Senkung des Rezidivsrisikos angewendet werden?
Intraoperativ appliziertes Mitomycin C
Intraoperativ applizierte Betablocker
Postoperative Anwendung von Brimonidin
Neoadjuvante Bestrahlung des Operationsgebiets mit Utraviolett(UV)-Licht
Adjuvante Gabe von Prostaglandinen
Was ist eine typische Nebenwirkung von topisch appliziertem Mitomycin C?
Farbveränderungen der Iris
Katarakt
Skleraverdickung
Proliferation von Endothelzellen
Ziliarkörperhyperplasie
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Rokohl, A.C., Heindl, L.M. & Cursiefen, C. Pterygium: Pathogenese, Diagnose und Therapie. Ophthalmologe 118, 749–763 (2021). https://doi.org/10.1007/s00347-021-01366-9
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