Über die Beeinflussung des A6-Abreibetestes durch Anzuchtmethode, Düngung und Alter der Testpflanzen

Zusammenfassung

Die verwendeten A6-Mutterpflanzen wurden im Glashaus durch Knollen und Stolonen vermehrt und in bestimmten zeitlichen Abständen mit N. P. K und NPK gedüngt.

Es stellte sich heraus, dass die Vermehrung durch Knollen vorteilhafter ist als jene mit Hilfe von Stolonen.

Die Prüfung der Reaktionsfähigkeit (Anzahl reagierende A6-Blätter in % ausgedrückt) erfolgte im Alter der Pflanzen von 3, 5, 8 und 11 Wochen durch Einreiben der Blätter mit dem im Verhältnis von 1∶5 verdünnten Isolat der Yn- und Ya-Virusstämme ab Samsuntabak. Es wurde eine mit dem Entwicklungsrhythmus der A6-Mutterpflanzen verbundene Schwankung der Reaktionsfähigkeit der A6-Blätter festgestellt. Während der Blütezeit (Alter 5–8 Wochen) entwickeln sich Blätter, die bei P- und NPK-Gaben für die Testarbeiten nicht geeignet sind. Es ist aber möglich, die Reaktionsfähigkeit und die Empfindlichkeit (Anzahl Läsionen pro Blatteinheit) der A6-Blätter durch reife- und blühverzögernde wöchentliche Stickstoffgaben auch während der Blühperiode hochzuhalten und dadurch die Ausnützung der A6-Pflanzen zu verbessern.

Von Wichtigkeit ist ferner, dass nur ausgewachsene, saftig-grüne Blätter verwendet werden.

Summary

The possibility of improving both the reactive capacity of A6 leaflets and the yield of leaves per plant by application of suitable fertilizers was examined in three series of experiments (1963–1964). The following fertilizer treatments were given every 3 weeks (the quantities shown, dissolved in 200 cm³ water, are per 15 cm pot): N = 0.28 g (NH₄)₂SO₄, P = 0.32 g superphosphate, K = 0.22 g ‘Patentkali’ and NPK(H) = 1.0 g ‘Nährsalz Hauert’ (18∶18∶18); O = zero, unfertilized.

The series of experiments referred to above were extended by further work in 1966 to determine the effect of weekly applications of nitrogen. The A6 mother plants used were propagated in the glasshouse from tubers or stolons. The daylength corresponded to a long day of 16 hours. During winter months daylight was supplemented with artificial light (Philips G97 400 W HPL), and during summer months light intensity was reduced by shading. The plants were, as far as possible, maintained at a temperature of 20°–24°C.

Testst of the reactive capacity were made on 3, 5, 8 and 11 week old plants by rubbing the leaflets with a 1∶5 dilution of isolates of strains of Yn and Ya virus (sap expressed from leaves of Samsun tobacco). Our work showed that propagation from tubers was preferable to propagation from stolons as the growth of the plants was both more uniform and more rapid. The largest plants with the greatest leaf yield were produced, as expected, by application of complete fertilizer; next in effect came applications of nitrogen (Table 1). The different fertilizers variously affected time of flowering. It was earliest with complete fertilizer followed by P, O, N and K treatments in that order (Table 2).

The reactive capacity of the A6 leaflets is related to the stage of development of the A6 mother plants. The highest reactive capacity (proportion of reacting leaflets expressed as a percentage) was shown by A6 leaflets in the early stage of growth (3–5 weeks old). During the flowering period (5–8 weeks old) both the susceptibility (number of lesions per leaflet unit) and the reactive capacity was reduced; this was most marked following applications of P and NPK and less so in the unfertilized and N treatments. Susceptibility increases again after flowering as a result of the development of side shoots with their associated young leaves (Table 6 and 7).

It is possible to maintain the reactive capacity of the A6 leaflets at a high level throughout the flowering period by delaying both flowering and maturation with applications of nitrogen, so that the A6 plants can be used as a source of leaflets throughout growth. In this way one can avoid losing the A6 plants as a source of leaflets during the flowering period. A large leaf yield is thus ensured which is of considerable importance in large serial experiments and where glasshouse space is limited (Table 8). It is, furthermore, of importance that only fully expanded, sappy-green leaflets should be used (Table 9).

Résumé

On a recherché dans trois séries d'expériences (1963–1964) s'il est possible, par la fumure appliquée, de hâter la capacité de réagir des folioles de clones A6 à l'infection par le virus Y et, en même temps, d'obtenir une importante masse foliaire par plante. Les plantes recevaient teutes les 3 semaines, par pot (15 cm de diamètre), les éléments nutritifs suivants (dissous dans 200 cm³ d'eau): N = 0,28 g (NH₄)₂ SO₄, P = 0,32 g superphosphate, K = 0.22 g ‘Patentkali’ et NPK (H) = 1,0 g de sel alimentaire dé Hauert (18∶18∶18); O = aucune fumure.

En 1966, nous avons complété les séries de récherches sus-mentionnées par d'autres dans le but de clarifier l'influence d'une fumure azotée hebdomadaire.

Les plantes-mères A6 utilisées dans les récherches étaient multipliées en serre à partir de tubercules et de stolons. La durée d'éclairement correspondait à une longueur de jour de 16 heures. Durant les mois d'hiver on suppléait à la lumière du jour par un éclairage artificiel (Philips G97 400 W HPL), et durant les mois d'été on atténuait l'intensité lumineuse par l'ombrage. On maintenait autant que possible les plantes à une température de 20° à 24°C. Les tests d'aptitude réactionnelle se faisaient à 3, 5, 8 et 11 semaines d'âge des plantes par frottement des folioles avec des isolats délayés (jus pressé de feuilles de tabac Samson) de souches Yn et Ya.

Les recherches nous révélaient que la multiplication des plantes A6 etait meilleure par tubercules que par stolons, le développement des plantes étant plus réguller et plus rapide dans le premier cas.

Conformément aux prévisions, les plantes les plus développées et aussi la plus grosse masse foliaire étaient obtenues avec la fumure complète; la fumure azotée venait en deuxième place (Tableau 1). Les différentes fumures influaient la durée jusqu'au début de la floraison. La floraison avait lieu le plus tôt avec la fumure complète et ensuite, successivement, avec les fumures P, O, N et K (Tableau 2).

L'aptitude réactionnelle des folioles A6 est liée au rythme de développement des plantesmères A6. L'aptitude réactionnelle (nombre de folioles donnant une réaction positive en %) des folioles A6 se révélait la meilleure à un stade jeune de développement (à l'age de 3 à 5 semaines). Pendant la floraison (à l'age de 5 à 8 semaines) la sensibilité diminuait (nombre de lésions par foliole), de même que l'aptitude réactionnelle et cela fortement avec applications de P et NPK, moins avec application de N ou sans fumure. Après la période de floraison, la sensibilité remontait résultant d'un développement de pousses latérales qui engendraient des jeunes feuilles (Tableau 6 et 7).

Il est possible de maintenir élevée l'aptitude réactionnelle des folioles A6 aussi pendant la floraison en retardant la maturité et la floraison par application d'azote de sorte que les plantes A6 puissent étre utilisées comme productrices de folioles pendant la période entière de la végétation. Ainsi on peut surmonter la neutralisation passagère de la faculté de produire des folioles des plantes A6 pendant la période de floraison. De cette façon également est possible la production d'une grosse masse foliaire, ce qui est du plus haut intérêt dans les grandes séries de tests à réaliser sur les espaces limités des serres (Tableau 8). Est en outre important qu'à présent on peut utiliser des folioles bien développées, vertes et pleines de sève (Tableau 9).