Potato Research

, Volume 24, Issue 1, pp 1–10 | Cite as

Einige physikochemische Eigenschaften des Kartoffel-virus M

  • E. Proll
  • R. -M. Leiser
  • W. -D. Ostermann
  • D. Spaar
Article

Zusammenfassung

Die Sedimentationskonstante S 20.w ° des Kartoffelvirus M (KVM) beträgt 167±1 S. Die Konzentrationsabhängigkeit ergibt sich aus der Beziehung s 20.w c =(167−33×c) S. Die Schwebedichte des KVM in Cäsiumchlorid (⌕ C5C1 25 ) beträgt 1,321 bis 1,322 g/ml. Mit Hilfe der SDS-Polyacrylamid-Gelektrophorese fanden wir zwei Proteine mit Molekülmassen von 35 700 und 33 000 Dalton. Die Nukleinsäure des KVM ist eine einsträngige RNS mit einer Molekülmasse von 2,38×106 Dalton (nicht denaturierende Bedingungen) bzw. 2,14×106 Dalton (nach Formaldehydbehandlung). Damit ist das KVM ein typischer Vertreter der Carlavirus-Gruppe.

Zusätzliche Stichworte

Sedimentationskonstante Schwebedichte Molekülmasse Protein Nukleinsäure 

Summary

Particles of potato virus M (PVM) were purified by the method of Proll & Richter (1979). After sugar density gradient centrifugation, preparations had a high level of purity and were homogeneous when examined under the electron microscope and in the analytical ultra-centrifuge. The sedimentation constant of particles (s°) is 167±1 S and the concentration relation s 20.w c =(167−33×c)S, where c is in mg/ml. The density of the PVM particles in caesium chloride (⌕ C5C1 25 ) is 1.321 to 1.322 g/ml, with tobacco mosaic virus particles (density=1.325 g/ml) as a standard. In SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, PVM protein sub-units migrated as two compounds with apparent sizes of 35 700 and 33 000 daltons, respectively. PVM nucleic acid is single stranded RNA, as shown by its positive orcinol and negative diphenylamine reactions, its degradation by RNase and its temperature melting curve. The RNA comprised 5.4% of the particle weight and its estimated molecule size was 2.38×106 daltons (undenatured) and 2.14×106 daltons (treated with formaldehyde). Physicochemical data on PVM are summarized in Table 1. The cryptogram of PVM is R/1: 2.4/5.4: E/E: S/Ap, carlavirus group.

Résumé

é virus M de la pomme de terre (PVM) a été urifié selon la méthode Proll & Richter 979). Après deux centrifugations selon la chnique du gradient de sucrose, nous avons btenu des préparations purifiées qui se sont firmées très homogènes au microscope ectronique, ainsi qu’avec l’ultracentrifugeuse analytique. Nous avons observé un effet de concentration de la valeur S et avons éterminé la constante de sédimentation (sO) à aide de distribution de S dans une zone de concentration de 0,5 à 0,1 mg de virus/ml à 57±1 S.

L’effet de concentration peut être obtenu ar la relation s 20.w c =(167−33×c)S, dont c at à utiliser en mg/ml.

La densité spécifiquedu PVM dans le aloride de césium (⌕ C5C1 25 ) est de 1,321 à 322 g/ml avec le virus de la mosaïque du abac comme marqueur, dont la densité est de 1,325 g/ml. Les masses moléculaires des capsomers ont été déterminées à l’aide de la SDS-polyacrylamide-gel-electrophorèse. Nous avons observé deux zones de protéines dont la masse moléculaire calculée fut de 35 700 et 33 000 dalton. L’acide nucléique du PVM comprend une spirale ARN; ceci a été obtenu avec la réaction positive d’orcine, des essais de catabolisme avec la RNase et de la courbe de fusion. Le poids représente 5,4 % de celui de la particule. La masse moléculaire est de 2,38×106 dalton (conditions non dénaturantes) 2,38×106 (après traitement au formaldéhyde).

Dans le tableau 1 sont résumées les données physicochimiques du PVM selon Proll & Richter (1979).

Le cryptogramme suivant a été obtenu: R/1: 2,4/5,4: E/E: S/Ap, ce qui permet de classer ce virus dans le groupe Carla.

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Literatur

  1. erg, Th. M., 1964. Studies in poplar mosaic virus and its relation to the host.Meded. Landbouwhogesch. Wageningen No 160, 59 pp.Google Scholar
  2. os, L., D. Z. Maat & M. Markow, 1972. A biologically highly deviating strain of red clover vein mosaic virus, usually latent in pea (Pisum sativum), and its differentiation from pea streak virus.Neth. J. Plant Path. 78: 125–152.Google Scholar
  3. akke, M. K. & W. F. Rochow, 1974. Ribonucleic acid of barley yellow dwarf virus.Virology 61: 240–248.Google Scholar
  4. unt, A. A. & R. H. Kenten, 1974. Cowpea mild mottle virus.CMI/AAB Descript. Pl. Viruses No 110, 4 pp.Google Scholar
  5. arpenter, J. M., B. Kassanis & R. F. White, 1977. The protein and nucleic acid of beet yellows virus.Virology 76: 101–109.Google Scholar
  6. erlach, E. & B. Deuticke, 1963. Eine einfache Methode zur Mikrobestimmung von Phosphat in der Papierchromatographie.Biochem. Z. 337: 477–479.Google Scholar
  7. ull, R., 1977. The grouping of small spherical plant viruses with single RNA-components.J. gen. Virology 36: 289–295.Google Scholar
  8. aemmli, U. K., 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T 4.Nature 227: 680–685.Google Scholar
  9. unsche, D. & R. Wollgiehn, 1975. Die Synthese von ribosomaler RNA in Chloroplasten vonNicotiana rustica.Biochim. biophys. Acta 294: 106–117.Google Scholar
  10. ul, H. L., 1975. SDS polyacrylamide gel electrophoresis of virion proteins as a tool for detecting the presence of virus in plants. II. Examination of further virus-host combinations.Phytopathol. Z. 83: 303–310.Google Scholar
  11. ul, H. L. & C. Wetter, 1964. Untersuchungen am carnation latent virus. I. Präparation, physikalische und chemische Eigenschaften.Phytopathol. Z. 49: 401–406.Google Scholar
  12. oll, E. & E. Ahrens, 1978.Chenopodium murale (L.)—Differentialwirt für die Kartoffelviren M und S.Arch. Phytopath. PflSchutz 14: 67–70.Google Scholar
  13. oll, E., E. Ahrens & J. Richter, 1978. Ein Beitrag zur Differenzierung von Isolaten des Kartoffel-Virus M.Arch. Phytopath. PflSchutz 14: 209–217.Google Scholar
  14. Proll, E. & J. Richter, 1979. Reinigung und einige Eigenschaften der Kartoffelviren M und S.Arch. Phytopath. PflSchutz 15: 233–245.Google Scholar
  15. Richter, J., R.-M. Leiser, E. Proll & U. Döring, 1979. Versuche zur Differenzierung von Stämmen der Kartoffelviren X, S, M und Y an Hand ihrer Immunogenität,Arch. Phytopathol. PflSchutz 15: 13–20.Google Scholar
  16. Rosenkranz, E. & D. G. Hagedorn, 1967. Purification and physicochemical properties of the Wisconsin pea streak virus.Phytopathology 57: 551–558.Google Scholar
  17. Siegel, A. & W. Hudson, 1959. Equilibrium centrifugation of two strains of tobacco mosaic virus in density gradients.Biochim. biophys. Acta 34: 254–255.CrossRefPubMedGoogle Scholar
  18. Varma, A., A. J. Gibbs & R. D. Woods, 1970. A comparative study of red clover vein mosaic virus and some other plant viruses.J. gen. Virol. 8: 21–32.PubMedGoogle Scholar
  19. Veerisetti, V. & M. K. Brakke, 1977. Differentiation of legume carlaviruses based on their biochemical properties.Virology 83: 226–231.Google Scholar
  20. Wetter, C., 1971a. Potato virus S.CMI/AAB Descript. Pl. Viruses No 60, 3 pp.Google Scholar
  21. Wetter, C., 1971b. Potato virus M.CMI/AAB Descript. Pl. Viruses No 87, 4 pp.Google Scholar

Copyright information

© Kluwer Academic Publishers 1981

Authors and Affiliations

  • E. Proll
    • 1
  • R. -M. Leiser
    • 1
  • W. -D. Ostermann
    • 1
  • D. Spaar
    • 1
  1. 1.Institut für Phytopathologie Aschersleben der Akademie der LandwirtschaftswissenschaftenAscherslebenDDR

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