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Chromatographia

, Volume 6, Issue 7, pp 305–313 | Cite as

Nouveaux échangeurs d'ions hydrophiles pour la chromatographie des protéines: Pipéridine-N-éthyl-cellulose et Di-isopropyl-aminoéthyl-cellulose

  • R. L. Munier
  • A. M. Drapier
  • B. Faivre
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Résumé

On a étudié la réaction de divers chlorures d'amines aliphatiques [β-chloroéthyldiisopropylamine, N-(β-chloroéthyl)-pipéridine, N-β-chloro-éthylpyrrolidine, β-chloroéthyl-diméthylamine] avec l'alcali-cellulose. Grâce à l'étude détaillée des courbes de neutralisation des celluloses basiques obtenues et de la triméthylaminoéthyl cellulose (TMAE-cellulose), on a pu mettre en évidence les différences de réactivité des chlorures d'amine pour la formation de liaisons éther avec la cellulose et pour la quaternisation des groupes amine. Dans le cas de la β-chloroéthyldi-isopropylamine et de la N-(β-chloroéthyl)-pipéridine, on obtient des celluloses à groupes amine tertiaire: respectivement, la di-isopropylamino-éthylcellulose (DIPAE-cellulose) et la Pipéridine-N-éthyl-cellulose (Pipé-NE-cellulose). Dans le cas de la N-(β-chloroéthyl)-pyrrolidine, la cellulose basique obtenue a une courbe de neutralisation qui correspond à un échangeur d'ions ayant des groupes amine tertiaire et des groupes ammonium quaternaire. Il en est de même dans le cas du produit de réaction de l'alcali-cellulose avec la β-chloroéthyldiméthylamine (cellulose modifiée de capacité supérieure à 0,3 m.équiv./g.).

Les propriétés chromatographiques de ces nouveaux échangeurs d'anions hydrophiles ont été étudiées; certains d' entre eux donnent des résultants très intérensants, spécialement, dans le domaine de la chromatographie des protéines. Pour la chromatographie des protéines la Pipéridine-N-éthyl-cellulose qui a une structure fibreuse compacte a un pouvoir séparateur aussi élevé que celui obtenu avec la DEAE-cellulose à structure “fibres gélifiées réticulées”.

New hydrophilic ion-exchangers for chromatography of proteins: Piperidine N-ethylcellulose and di-isopropylaminoethyl cellulose

Summary

Reaction of different aliphatic amine chlorides [β-chloroethyldiisopropylamine, N-(β-chloroethyl)-piperidine, N (β-chloroethylpyrrolidine, β-chloroethyldimethylamine) with alkalicellulose has been investigated. Detailed investigation of titration curves of the basic cellulose thus obtained and of trimethylaminoethylcellulose (TMAE-cellulose) has shown that the reactivity of various amine chlorides varies in the case of formation of ether bonds with cellulose as well as in the case of quaternization of amino-groups. With β-chlorethyldiisopropylamine and N-(β-chloroethyl-)piperidine, celluloses with tertiary amino-groups were obtained, namely, di-isopropylamino ethyl cellulose (DIPAE-cellulose) and piperidine-N-ethyl-cellulose (Pipe-NE-cellulose). Basic cellulose obtained with N-(β-chloroethyl)-pyrrolidine gives a titration curve corresponding to an ion exchanger carrying tertiary amino and quaternary ammonium groups. The same is true for the reaction product of β-chloroethyl-dimethylamine with alkali-cellulose (modified cellulose with an exchange capacity greater than 0.3 m.equiv g−1). Chromatographic behaviour of these new hydrophilic anion exchangers has been investigated. Some of them give very interesting results, mainly in the chromatography of proteins; thus, piperidine-N-ethylcellulose with a dense fibrous texture, has a separating power as great as that of DEAE cellulose with fibres of “crosslinked gel” type.

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Bibliographie

  1. [1]
    Sober, H. A. etPeterson, E. A., J. Amer. Chem. Soc. 1954,76, 1711.CrossRefGoogle Scholar
  2. [2]
    Peterson, A. E. etSober, H. A., J. Amer. Chem. Soc. 1956,78, 751.CrossRefGoogle Scholar
  3. [3]
    Gelotte, B., Flodin, P. etKillander, J., Arch. Biochem. Biophys. 1962,1 (supplément), 319.PubMedGoogle Scholar
  4. [4]
    A. B. Pharmacia, Uppsala, marque de fabrique.Google Scholar
  5. [5]
    Sober, H.A., Gutter, F. J. Wyckoff, M. M. etPeterson, A. E., J. Amer. Chem. Soc. 1956,78, 756.CrossRefGoogle Scholar
  6. [6]
    Champetier, G., Kelecsenyi, Dumesnil, E., Montégudet, G. etPetit, J., C. R. Acad. Sci. 1956,243, 267.Google Scholar
  7. [7]
    Benerito, R. R., Woodward, B. B. etGuthrie, J. D., Anal. Chem. 1965,37, 1693.Google Scholar
  8. [8]
    Porath, J., Arkiv. Kemie 1957,11, 97.Google Scholar
  9. [9]
    Winters, J. C. etKunin, R., Ind. Eng. Chem. 1949,41, 460.CrossRefGoogle Scholar
  10. [10]
    Perlmann, G. E., J. Gen. Physiol. 1952,35, 711.PubMedGoogle Scholar
  11. [11]
    Longsworth, L. G., Cannan, R. K. etMac Innes, D. A., J. Amer. Chem. Soc., 1940,62, 2580.CrossRefGoogle Scholar
  12. [12]
    Longsworth, L. G., J. Amer. Chem. Soc. 1939,61, 529.CrossRefGoogle Scholar
  13. [13]
    Tiselius, A. etSvensson, H., Trans. Faraday Soc. 1940,36, 16.CrossRefGoogle Scholar
  14. [14]
    Munier, R. L., Chimie Analytique (France), 1955, p. 291 (fig. 15).Google Scholar
  15. [15]
    Mandeles, S., J. Chromatog. 1960,3, 256.CrossRefGoogle Scholar
  16. [16]
    Thompson, C. M., Laboratory practice, 1967,16, 968.Google Scholar
  17. [17]
    Veder, H. A., J. Chromatog., 1963,10, 507.Google Scholar

Copyright information

© Friedr. Vieweg & Sohn, Verlagschesellschaft mbH 1973

Authors and Affiliations

  • R. L. Munier
    • 1
  • A. M. Drapier
    • 1
  • B. Faivre
    • 1
  1. 1.C.N.R.S.Institut PasteurParisFrance

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