Skip to main content
Log in

Quantitative Bestimmung der Penicillinsäure in pflanzlichen Lebensmitteln

Quantitative determination of penicillic acid in vegetable foods

  • Originalarbeiten
  • Published:
Zeitschrift für Lebensmittel-Untersuchung und Forschung Aims and scope Submit manuscript

Summary

A procedure for the quantitative determination of penicillic acid in foods of plant origin (peas, rice, oatmeal, and coconut flakes) is described. For extraction a 1 + 1 mixture of dichlormethane and methanol is used. The final separation of penicillic acid is carried out by two-dimensional thinlayer chromatography. Penicillic acid is (in situ) converted into a strongly fluorescent derivative (maximal emission at 440–445 nm by excitation at 365–370 nm) by reaction with diphenylboric acid-2-aminoethylester during an immersion procedure. The intensity of fluorescence is linearly proportional to the amount of penicillic acid within the concentration range from about 50 to 600 ng per spot. The recovery rate is about 95%. The lower limit for the semiquantitative detection of penicillic acid is about 5 ng per spot.

Zusammenfassung

Es wird ein Verfahren zur quantitativen Bestimmung der Penicillinsäure in pflanzlichen Lebensmitteln (Erbsen, Reis, Haferflocken und Kokosraspeln) angegeben. Als Extraktionsmittel wird ein Gemisch von Dichlormethan/Methanol (1 + 1) benutzt. Die terminale Abtrennung der Penicillinsäure erfolgt durch zweidimensionale Dünnschichtchromatographie. Durch Umsetzung mit Diphenylborsäure-2-ethanolamin in einem Tauchverfahren wird die Penicillinsäure auf der Platte in ein stark fluorescierendes Derivat verwandelt (maximale Emission bei 440–445 nm nach Anregung bei 365–370 nm).

Die Fluorescenzintensität ist der Menge an Penicillinsäure im Bereich von ca. 50–600 ng pro Fleck direkt proportional. Die Wiederfindungsraten liegen bei etwa 95%. Die untere Grenze für den semiquantitativen Nachweis der Penicillinsäure liegt bei etwa 5 ng pro Fleck.

This is a preview of subscription content, log in via an institution to check access.

Access this article

Price excludes VAT (USA)
Tax calculation will be finalised during checkout.

Instant access to the full article PDF.

Similar content being viewed by others

Literatur

  1. Alsberg CL, Black OF (1913) US Dept Agric Bull Bur Plant Ind 270:7

    Google Scholar 

  2. Ciegler A, Detroy RW, Lillehoj EB (1971) Penicillic Acid. In: Microbial Toxins, Vol. VI, pp 414–420, Ciegler A, Kadis S, Ail SJ (eds) Academic Press, New York London

    Google Scholar 

  3. Olivigni FJ, Bullerman LB (1978) A microbial assay for penicillic acid. J Food Prot 41:432

    Google Scholar 

  4. Wyllie TD, Moorehouse LG (1978) Mycotoxic Fungi, Mycotoxins, Mycotoxicoses. Vol. 1, pp 311–316, Marcel Dekker Inc., New York Basel

    Google Scholar 

  5. Lieu FY, Bullerman LB (1978) Binding of patulin and penicillic acid to glutathione and cysteine and toxicity of the resulting adducts. Milchwissenschaft 33:16

    Google Scholar 

  6. Bentley R, Keil JG (1962) Tetronic acid biosynthesis in molds. Formation of penicillic acid in Penicillium cyclopium. J Biol Chem 237:867

    Google Scholar 

  7. Jones JB, Young JM (1966) Carcinogenicity of lactones. 1. The reaction of 4-methylbuteno- and 4-methylbutano-lactones with primary amines. Can J Chem 44:1059

    Google Scholar 

  8. Stoloff L, Nesheim S, Yin L, Rodricks JV, Stack M, Campbell AD (1971) A multitoxin detection method for aflatoxins, ochratoxins, zearalenone, sterigmatocystin and patulin. J Assoc Off Anal Chem 54:91

    Google Scholar 

  9. Ciegler A, Kurtzmann CP (1970) Penicillic acid production by blue-eye fungi on various agricultural commodities. Appl Microbiol 20:761

    Google Scholar 

  10. Bullerman LB (1978) Methods for detecting mycotoxins in food and beverages. In: Food Beverage Mycology, pp 445–470, Avi, Westport, Conn

    Google Scholar 

  11. Brown RF (1968) The effect of some mycotoxins on the brineshrimp Artemia salina. J Am Oil Chem Soc 46:119

    Google Scholar 

  12. Sternberg M (1956) Studii Cercetani Chim 4:315

    Google Scholar 

  13. Ciegler A, Kurtzmann CP (1970) Fluorodensitometric assay of penicillic acid. J Chromatogr 31:511

    Google Scholar 

  14. Ciegler A, Mintzlaff HJ, Weisleder D, Leistner L (1972) Potential production and detoxification of penicillic acid in mold-fermented sausage (Salami). Appl Microbiol 24:114

    Google Scholar 

  15. Durackova Z, Betina V, Nemec P (1976) Systematic analysis of mycotoxins by TLC. J Chromatogr 116:141

    Google Scholar 

  16. Scott PM, Lawrence JW, van Walbeek W (1970) Detection of mycotoxins by thin-layer chromatography: Application to screening of fungal extracts. Appl Microbiol 20:839

    Google Scholar 

  17. Tauchmann F, Toth L, Leistner L (1971) Halbquantitative Bestimmung von Patulin in Fleisch und Fleischwaren. Fleischwirischaft 7:1079

    Google Scholar 

  18. Meyer RA (1977) Chlor-Benzidin als dünnschichtchromatographisches Nachweisreagenz für Patulin in Apfelsaft. Nahrung 21:85

    Google Scholar 

  19. Steyn PS, Gorst-Allman CP (1979) Screening method for detection of thirteen common mycotoxins. J Chromatogr 175:325

    Google Scholar 

  20. Scott PM (1974) Patulin. In: Mycotoxins, Purchase IFH (ed) p 383. Elsevier Scientific Publishing Company. Amsterdam Oxford New York

    Google Scholar 

  21. Meyer RA (1976) Chlor-Tolidin und Chlor-Dianisidin als dünnschichtchromatographische Detektionsreagenzien für Patulin. Nahrung 20:79

    Google Scholar 

Download references

Author information

Authors and Affiliations

Authors

Additional information

Diese Arbeit wurde vom Bundesministerium für Jugend, Familie und Gesundheit gefördert.

Rights and permissions

Reprints and permissions

About this article

Cite this article

Ehnert, M., Popken, A.M. & Dose, K. Quantitative Bestimmung der Penicillinsäure in pflanzlichen Lebensmitteln. Z Lebensm Unters Forch 172, 110–114 (1981). https://doi.org/10.1007/BF01042415

Download citation

  • Received:

  • Issue Date:

  • DOI: https://doi.org/10.1007/BF01042415

Navigation