Zusammenfassung
Acetylcholin ist ein Neuromodulator, der in weiten Bereichen des Zentralnervensystems ausgeschüttet wird und eine wichtige Rolle bei Bewusstsein, Aufmerksamkeit und Lernen spielt. Aufgrund seiner „aktivierenden“ Wirkung auf neuronaler (EEG) und Verhaltensebene ist die Rolle dieses Neuromodulators in der Anästhesiologie seit jeher von Interesse. Auf der Basis vielfältiger Tier- und Humanstudien besteht weitestgehend Konsens, dass Anästhetika die Ausschüttung von Acetylcholin im Zentralnervensystem verringern und hierdurch einen Teil ihrer anästhetischen Wirkung entfalten.
Diese Erkenntnis steht jedoch in einem scheinbaren Widerspruch zu Befunden, wonach Acetylcholin bestimmte Klassen von Interneuronen erregt, also jene Komponenten im neuronalen Netzwerk verstärkt, die den hemmenden Neurotransmitter γ‑Aminobuttersäure (GABA) ausschütten und somit eine zentrale Rolle in der Vermittlung der Effekte zahlreicher Anästhetika spielen. Mit dem Schwerpunkt auf kortikalen Schaltkreisen werden in dieser Perspektive aktuelle Entwicklungen auf dem Gebiet der zellulären Neurophysiologie erläutert, die ein Licht auf die Interaktion zwischen Acetylcholin und GABA werfen.
Abstract
Acetylcholine is a neuromodulator which is released throughout the central nervous system and plays an essential role in consciousness and cognitive processes including attention and learning. Due to its ‘activating’ effect on the neuronal and behavioral level its interaction with anesthetics has long been of interest to anesthesiologists. It is widely held that a reduction of the release of acetylcholine by general anesthetics constitutes part of the anesthetic effect. This notion is backed by numerous human and animal studies, but is also in seeming contradiction to findings that acetylcholine activates specific classes of inhibitory neurons: if acetylcholine excites elements within the neuronal network responsible for the release of the inhibitory neurotransmitter γ-aminobutyric acid (GABA), its withdrawal should diminish, not enhance, the effect of anesthetics.
Focusing on cortical circuits, we present an overview of recent advances in cellular neurophysiology, particularly the interactions between inhibitory neuron classes, which provide insights on the interaction between acetylcholine and GABA.
Literatur
Alkire MT, Pomfrett CJ, Haier RJ, Gianzero MV, Chan CM, Jacobsen BP, Fallon JH (1999) Functional brain imaging during anesthesia in humans: effects of halothane on global and regional cerebral glucose metabolism. Anesthesiology 90:701–709
Azevedo FAC, Carvalho LRB, Grinberg LT, Farfel JM, Ferretti REL, Leite REP, Filho WJ, Lent R, Herculano-Houzel S (2009) Equal numbers of neuronal and nonneuronal cells make the human brain an isometrically scaled-up primate brain. J Comp Neurol 513:532–541
Backman SB, Fiset P, Plourde G (2004) Cholinergic mechanisms mediating anesthetic induced altered states of consciousness. Prog Brain Res 145:197–206
Braitenberg V, Schüz A (1998) Cortex: statistics and geometry of neuronal connectivity. Springer, Berlin Heidelberg
Chen N, Sugihara H, Sur M (2015) An acetylcholine-activated microcircuit drives temporal dynamics of cortical activity. Nat Neurosci 18:892–902
Constantinople CM, Bruno RM (2011) Effects and mechanisms of wakefulness on local cortical networks. Neuron 69:1061–1068
Cottam JCH, Smith SL, Häusser M (2013) Target-specific effects of somatostatin-expressing interneurons on neocortical visual processing. J Neurosci 35:19567–19578
Dong HL, Fukuda S, Murata E, Higuchi T (2006) Excitatory and inhibitory actions of isoflurane on the cholinergic ascending arousal system of the rat. Anesthesiology 104:122–133
Drexler B, Grasshoff C, Rudolph U, Unertl K, Antkowiak B (2006) The GABA(A) receptor family: Possibilities for the development of better anesthetics. Anaesthesist 55:287–295
Fanselow EE, Richardson KA, Connors BW (2008) Selective, state-dependent activation of somatostatin-expressing inhibitory interneurons in mouse neocortex. J Neurophysiol 100:2640–2652
Fodale V, Quattrone D, Trecroci C, Caminiti V, Santamaria LB (2006) Alzheimer’s disease and anesthesia: implications for the central cholinergic system. Br J Anaesth 97:445–452
Galaretta M, Hestrin S (1999) A network of fast-spiking cells in the neocortex connected by electrical synapses. Nature 402:72–75
Gentet LJ, Kremer Y, Taniguchi H, Huang ZJ, Staiger JF, Petersen CCH (2012) Unique functional properties of somatostatin-expressing GABAergic neurons in mouse barrel cortex. Nat Neurosci 15:607–612
Gibson JR, Beierlein M, Connors BW (1999) Two networks of electrically coupled inhibitory neurons in neocortex. Nature 402:75–79
Goard M, Dan Y (2009) Basal forebrain activation enhances cortical coding of natural scenes. Nat Neurosci 12:1440–1445
Hasselmo ME, Sarter M (2011) Modes and models of forebrain cholinergic neuromodulation of cognition. Neuropsychopharmacology 36:52–73
Isaacson JS, Scanziani M (2011) How inhibition shapes cortical activity. Neuron 72:231–243
Jiang X, Shen S, Cadwell CR, Berens P, Sinz F, Ecker AS, Tolias AS (2015) Principles of connectivity among morphologically defined cell types in adult neocortex. Science. doi:10.1126/science.aac9462
Kawaguchi Y (1997) Selective cholinergic modulation of cortical GABAergic cell subtypes. J Neurophysiol 78:1743–1747
Kikuchi T, Wang Y, Sato K, Okumura F (1998) In vivo effects of propofol on acetylcholine release from the frontal cortex, hippocampus and striatum studied by intracerebral microdialysis in freely moving rats. Br J Anaesth 80:644–648
Laalou FZ, Egard M, Guillot M, Noll E, Taglang G, Pain L (2010) Influence of perioperative cognitive status on propofol requirement to maintain hypnosis in the elderly. Br J Anaesth 105:342–346
Lawrence JJ (2008) Cholinergic control of GABA release: emerging parallels between neocortex and hippocampus. Trends Neurosci 31:317–327
Leung LS, Petropoulos S, Shen B, Luo T, Herrick I, Rajakumar N, Ma J (2011) Lesion of cholinergic neurons in nucleus basalis enhances response to general anesthetics. Exp Neurol doi:10.1016/j.expneurol.2011.01.019
Marlin JA, Carter AG (2014) GABA-A receptor inhibition of local calcium signaling in spines and dendrites. J Neurosci 34:15898–15911
Okun M, Lampl I (2008) Instantaneous correlation of excitation and inhibition during ongoing and sensory-evoked activities. Nat Neurosci 11:535–537
Pabst M, Braganza O, Dannenberg H, Hu W, Pothmann L, Rosen J, Mody I, Loo K van, Deisseroth K, Becker AJ, Schoch S, Beck H (2016) Astrocyte intermediaries of septal cholinergic modulation in the hippocampus. Neuron 90:853–865
Pain L, Jeltsch H, Lehmannn O, Lazarus C, Laalou FZ, Cassel JC (2000) Central cholinergic depletion induced by 192 IgG-saporin alleviates the sedative effects of propofol in rats. Br J Anaesth 85:869–873
Pfeffer CK, Xue M, He M, Huang ZJ, Scanziani M (2013) Inhibition of inhibition in visual cortex: the logic of connections between molecularly distinct interneurons. Nat Neurosci 16:1068–1076
Sohal VS, Zhang F, Yizhar O, Deisseroth K (2009) Parvalbumin neurons and gamma rhythms enhance cortical circuit performance. Nature 459:698–702
Xiang Z, Huguenard JR, Prince DA (1998) Cholinergic switching within neocortical inhibitory networks. Science 281:985–988
Yizhar O, Fenno LE, Davidson TJ, Mogri M, Deisseroth K (2011) Optogenetics in neural systems. Neuron 71:9–34
Zhang W, Zhang L, Liang B, Schroeder D, Zhang Z‑W, Cox GA, Li Y, Lin D‑T (2016) Hyperactive somatostatin interneurons contribute to excitotoxicity in neurodegenerative disorders. Nat Neurosci 19:557–559
Zhao S, Ting JT, Atallah HE, Qiu L, Tan J, Gloss B, Augustine GJ, Deisseroth K, Luo M, Graybiel AM, Feng G (2011) Cell type-specific channelrhodopsin-2 transgenic mice for optogenetic dissection of neural circuitry function. Nat Methods 8:745–752
Danksagung
Die Abb. 4 wurde dem Abschlussbericht zum Forschungsprojekt BWM/SABX/BA001 entnommen, das durch das Bundesministerium für Verteidigung gefördert wurde (Empfänger: Prof. Dr. B. Antkowiak). Wir danken Prof. Dr. Bernd Antkowiak und Michael Krumbein für Diskussionen zum Thema und die kritische Durchsicht des Manuskripts sowie Claudia Holt und Ina Pappe für exzellente technische Unterstützung.
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Ethics declarations
Interessenkonflikt
L. Liebig, C. Grasshoff und H. Hentschke geben an, dass kein Interessenkonflikt besteht.
Alle nationalen Richtlinien zur Haltung und zum Umgang mit Labortieren wurden eingehalten und die notwendigen Zustimmungen der zuständigen Behörden liegen vor.
Glossar
- Pyramidenzellen
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Neurone mit elongierten Dendriten und angenähert pyramidenförmigem Soma, die den erregenden Neurotransmitter Glutamat ausschütten. Pyramidenzellen sind häufig Projektionsneurone, die über langreichweitige Axone Informationen an andere kortikale sowie extrakortikale Gehirnareale weiterleiten.
- Interneurone
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Neurone, die den inhibitorischen Neurotransmitter γ‑Aminobuttersäure (GABA) ausschütten. Im Gegensatz zu Pyramidenzellen projizieren Interneurone fast ausschließlich lokal. Sie lassen sich anhand u. a. elektrophysiologischer, biochemischer und morphologischer Charakteristika in eine Vielzahl an Untergruppen unterteilen (eine begrenzte Auswahl s. Tab. 1).
- Fast-spiking
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Fast-spiking Neurone (meist Interneurone) sind in der Lage, bei konstanter intrazellulärer Strominjektion Aktionspotenziale mit Raten von >100 Hz zu emittieren. Die Muster von Aktionspotenzialen, die Neurone bei Strominjektion emittieren, sind ein Kriterium zur Klassifizierung. Andere übliche Feuermuster sind z. B. „adapting“, „irregular“, „intrinsically bursting“.
- Parvalbumin (PV)
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Kalziumbindendes Protein, das in spezifischen Interneuronenklassen exprimiert wird und daher als wichtiger Marker für die Klassifizierung von Interneuronen verwendet wird. Die meisten PV-positiven Neurone sind fast-spiking. Andere, weithin verwendete Marker zur Klassifizierung sind z. B. Somatostatin (SOM), Cholecystokinin (CCK) und vasointestinales Polypeptid (VIP) (allesamt Peptidhormone).
- Korbzellen (basket cells)
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Interneuronen, die synaptische Kontakte überwiegend auf den Somata von Pyramidenzellen herstellen. Morphologie und synaptische Projektionsmuster sind ein weiteres wichtiges Merkmal zur Unterteilung von Interneuronen in Klassen. Korbzellen exprimieren entweder PV oder CCK.
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Liebig, L., Grasshoff, C. & Hentschke, H. Intern(euron)al affairs. Anaesthesist 65, 609–614 (2016). https://doi.org/10.1007/s00101-016-0197-9
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DOI: https://doi.org/10.1007/s00101-016-0197-9