Zur Entwicklungsgeschichte vonPetrobius brevistylis (Thysanura, Insecta)

  • O. Larink
Article

Zusammenfassung

1.Petrobius brevistylisCarpenter lebt an Felsküsten im Supralitoral, in Deutschland auf Helgoland. Die Eiablage erfolgt im Juni und Juli. Die Embryonal-entwicklung dauert etwa 1 Jahr.

2. Die superfizielle Furchung setzt sofort ein. Es entsteht in wenigen Tagen ein Blastoderm. Dieses scheidet eine Blastodermmembran ab, an der verschiedene Schichten zu unterscheiden sind.

3. Am hinteren Eipol bildet sich eine runde Keimscheibe, die sich bald in die Länge streckt. Es entsteht der Keimstreif, an dem als erste Zeichen der äußeren Segmentierung die Knospen von Antenne, Mandibel und Maxille gebildet werden.

4. Danach kommt es zur Ausbildung von Embryonalhäuten. Das Blastoderm geht zu einem großen Teil in die Serosa über, während das Amnion den Embryo eine Zeitlang ventral umhüllt. Wenn sich die Serosa zurückzieht, breitet sich das Amnion auf der Dotteroberfläche aus.

5. Die Ausformung der Extremitäten an Kopf, Thorax und Abdomen wird geschildert. Der Hypopharynx entsteht über dem Mandibelsegment. Weder die unpaare Lingua, noch die paarige Superlinguae sind Extremitäten homolog. Am 1. Abdominalsegment bilden sich große Pleuropodien, die bis kurz vor dem Schlüpfen persistieren.

6. Von der frühen Lage am hinteren Eipol wandert der Keimstreif zur Mitte der Ventralseite (Blastokinese). Dort sinkt er in den Dotter ein und wird von Dotterwülsten völlig verdeckt. Es bildet sich auf diese Weise eine Art Amnionhöhle.

7. Die Mesodermablösung erfolgt durch Einwanderung von Zellen aus einer Sprossungszone am Hinterende des Keimstreifs. Die Mesodermlamelle zerfällt in einzelne Somite, in denen durch Spaltraumbildung Coelome entstehen, die in die Extremitäten eindringen. Es werden 10 abdominale Coelome gebildet, aber auch das 11. Segment enthält Mesoderm. Im Kopf findet man solides Mesoderm im Interkalarsegment, ein Paar große Coelome im Antennensegment und unpaares Mesoderm im Labrum. Im Interkalarmesoderm bilden sich die paarigen Suboesophagealkörper. Gonadenanlagen liegen im Coelom des 2. und 3. Thoraxsegmentes und in den ersten Abdominalsegmenten.

8. Der Vorderdarm senkt sich früh ein, er ist bei schlupfreifen Embryonen rechtwinklig gebogen. Der Enddarm durchbricht das noch unsegmentierte abdominale Mesoderm und biegt später nach vorn um. Er besitzt eine nichtzellige Abschlußmembran zum Dotter hin.

9. Es wird ein vorderes und hinteres Tentorium aus paarigen Einstülpungen im Mandibel- bzw. Labialsegment gebildet. Die Anlagen verschmelzen nicht miteinander.

10. Das Bauchmark entwickelt sich aus Neuroblasten. Das Neuropilem liegt an der dorsalen Seite der Ganglien. Es werden 11 abdominale Ganglien angelegt. Bei frühen Stadien zeigt sich ein eindeutiger Mittelstreif.

11. Das Gehirn entwickelt sich aus 3 Protocerebralloben (1. Lobus = Lobus opticus, 1. + 2. Lobus = Archicerebrum, 3. Lobus = Prosocerebrum), dem Deuto- und dem Tritocerebrum. Das Prosocerebrum (Lobus 3 + 3′) bildet Protocerebralbrücke, Zentralkörper und Nebenlappen mit der Kommissur.

On the embryology ofPetrobius brevistylis (thysanura, insecta)

Abstract

Petrobius brevistylisCarpenter lives in the rocky supralittoral of the island Helgoland. Eggposition lasts from June to July, embryonic development one year. The superficial cleavage begins immediately after eggposition. Within a few days, a blastoderm is formed which gives rise to a cuticle consisting of different layers. At the rear tip of the egg a round germ disc develops and spreads out. The germ band gives rise to the primordia of antennae, mandibles, and maxillae — the first signs of segmentation. Most of the blastoderm differentiates into the serosa, while the amnion temporarily covers the ventral side of the embryo. When the serosa shrinks the amnion spreads out over the yolk surface. Details of the formation of the extremities of head, thorax, and abdomen are described. The hypopharynx arises rather late on the mandible segment. Neither lingua nor superlinguae are homologous to the extremities. At the first abdominal segment a pair of pleuropodia are formed, which disappear shortly before hatching. The germ band moves from the rear tip of the egg to the ventral part (blastokinesis), where it sinks into the yolk; parts of the yolk form an amniotic cavity. Mesoderm formation takes place by immigration of cells from a proliferation zone at the back of the germ band. The mesoderm lamella divides into several somites which form coelomic cavities entering into the extremities. Ten abdominal coelomic sacs are formed. The eleventh segment contains a solid mesodermal mass. In the head, a solid mesodermal mass occurs in the premandibular segment, and a pair of large coelomic sacs in the antenna segment. The labrum reveals an unpaired mesoderm. A pair of suboesophageal bodies are formed in the premandibular segment. The stomodaeum caves in early during development; at the end of the development it has a rectangular shape. The proctodaeum breaks through the unsegementated abdominal mesoderm and later on turns to the front; it has evidently a cuticular membrane separating it from the yolk. A front and a back tentorium are formed by paired invaginations on the mandible and labium segments; they do not fuse. The ventral nerve chain develops from large neuroblasts. The neuropile is situated at the dorsal side of the ganglions. Eleven abdominal ganglions are formed. During early developmental stages a median cord can clearly be recognized. The brain develops from 3 protocerebral lobes, the deutocerebrum, and the tritocerebrum. The prosocerebrum, the third protocerebral lobe, forms the pons cerebralis, the central body, and the corpora ventralia with the commissure.

Zitierte literatur

  1. Baden, V., 1936. Embryology of the nervous system in the grasshopperMelanoplus differentialis (Acrididae, Orthoptera).J. Morph. 60, 159–190.Google Scholar
  2. —— 1937. Origin and fate of the median cord in the grasshopperMelanoplus differentialis (Acrididae, Orthoptera).J. Morph. 63, 219–227.Google Scholar
  3. Bitsch, J., 1963. Morphologie céphalique deMachilis (Thysanura, Insecta).Annls Sci. nat. (Zool. Biol. anim.) 12, 501–706.Google Scholar
  4. Carpenter, G. H., 1913. The Irish species ofPetrobius.Ir. Nat. 22, 228–233.Google Scholar
  5. Chaudonneret, J., 1950. La morphologie céphalique deThermobia domestica (Packard) (Insecte aptérygote Thysanoure).Annls Sci. nat. (Zool. Biol. anim.) 11, 145–302.Google Scholar
  6. Hanström, B., 1940. Inkretorische Organe, Sinnesorgane und Nervensystem des Kopfes einiger niederer Insektenordnungen.K. svenska Vetensk Akad. Handl. 18, 1–266.Google Scholar
  7. Heymons, R., 1897. Entwicklungsgeschichtliche Untersuchungen anLepisma saccherina.Z. wiss. Zool. 62, 583–631.Google Scholar
  8. —— &Heymons, H., 1905. Die Entwicklungsgeschichte vonMachilis.Verh. dt. zool. Ges. 15, 123–135.Google Scholar
  9. Hirschler, J., 1928. Embryogenese der Insekten.Handb. Ent. 1, 570–824.Google Scholar
  10. Holmgren, N., 1916. Zur vergleichenden Anatomie des Gehirns von Polychaeten, Onychophoren, Xiphosuren, Crustaceen, Myriapoden und Insekten.K. svenska Vetensk Akad. Handl. 56, 1–303.Google Scholar
  11. —— 1920. Vergleichendes über den Kopfbau der Crustaceen und Hexapoden.Ark. Zool. 13, 1–59.Google Scholar
  12. Ibrahim, M. M., 1958. Grundzüge der Organbildung im Embryo vonTachycines (Insecta, Saltatoria).Zool. Jb. (Abt. Anat. Ontog. Tiere) 76, 541–594.Google Scholar
  13. Johannsen, O. A. &Butt, F. H. 1941. Embryology of insects and myriapods. McGraw-Hill, New York, 462 pp.Google Scholar
  14. Larink, O., 1968. Zur Biologie des küstenbewohnenden MachilidenPetrobius brevistylis (Thysanura, Insecta).Helgoländer wiss. Meeresunters. 18, 124–129.Google Scholar
  15. Manton, S. M., 1949. Studies on the Onychophora. VII. The early embryonic stages ofPeripatopsis and some general considerations concerning the morphology and phylogeny of the arthropoda.Phil. Trans. R. Soc. (B)233, 483–580.Google Scholar
  16. Miller, A., 1940. Embryonic membranes, yolk cells and morphogenesis of the stoneflyPteronarcys proteus Newmann.Ann. ent. Soc. Am. 33, 437–477.Google Scholar
  17. Paclt, J., 1956. Biologie der primär flügellosen Insekten. G. Fischer, Jena, 258 pp.Google Scholar
  18. —— 1960. Felsenspringer (Ins. Thysanura) des Senckenberg Museums.Senckenberg biol. 41, 325–332.Google Scholar
  19. Palissa, A., 1964. Apterygota.In: Die Tierwelt Mitteleuropas. Hrsg. von P. Brohmer, P. Ehrmann & G. Ulmer. Quelle & Meyer, (Leipzig) Heidelberg, Bd. 4 (Lfg. 1a), 350–407.Google Scholar
  20. Philiptschenko, J., 1912. Beiträge zur Kenntnis der Apterygoten. III. Die Embryonalentwicklung vonIsotoma cinerea.Nic. Z. wiss. Zool. 103, 519–660.Google Scholar
  21. Remane, A., 1959. Geschichte der Tiere.In: Die Evolution der Organismen. Hrsg von G. Heberer. 2. Aufl. G. Fischer, Stuttgart,1, 340–424.Google Scholar
  22. Romeis, B., 1948. Mikroskopische Technik. Oldenbourg, München, 695 pp.Google Scholar
  23. Roonwal, M. L., 1936. Studies on the embryology of the African migratory locust:Locusta migratoria migratorioides. I. The early development, with a new theory of multiphased gastrulation among insects.Phil. Trans. R. Soc. (B)226, 391–421.Google Scholar
  24. —— 1937. Studies on the embryology of the African migratory locust:Locusta migratoria migratorioides. II. Organogeny.Phil. Trans. R. Soc. (B)227, 175–244.Google Scholar
  25. —— 1939. Some recent advances in insect embryology, with a complete bibliography of the subject.J. R. Asiat. Soc. Beng. (Sci.) 4, 17–105.Google Scholar
  26. Satija, R. C., 1957. A histological study of the brain, optic lobes and thoracic nerve cord ofPetrobius brevistylis, with special reference to the descending nervous pathway.Res. Bull. Panjab Univ. Sci. 131, 493–510.Google Scholar
  27. Scholl, G., 1963. Embryologische Untersuchungen an Tanaidaceen (Heterotanais oerstedt Kröger)Zool. Jb. (Abt. Anat. Ontog. Tiere) 80, 500–554.Google Scholar
  28. —— 1964. Die Kopfentwicklung vonCarausius (= Dixippus) morosus.Zool. Anz. (Suppl. Bd)28, 580–596.Google Scholar
  29. Schwangart, F., 1904. Studien zur Entodermfrage bei den Lepidopteren.Z. wiss. Zool. 76, 167–212.Google Scholar
  30. Sharov, A. G., 1953. Die Entwicklung der Thysanuren im Zusammenhang mit dem Problem der Phylogenie der Insekten. [Russ.]Trudy Inst. Morf. Zhivot. 8, 63–127.Google Scholar
  31. —— 1966. Basic arthropodan stock; with special references to insects. Pergamon Press, Oxford, 271 pp.Google Scholar
  32. Siewing, R., 1963. Zum Problem der Arthropodenkopfsegmentierung.Zool. Anz. 170, 429–468.Google Scholar
  33. —— 1965. Zur Frage der Homologie ontogenetischer Prozesse und Strukturen.Zool. Anz. (Suppl. Bd)28, 51–95.Google Scholar
  34. Slifer, E. H., 1937. The origin and fate of the membranes surrounding the grasshopper egg, together with some experiments on the source of the hatching enzyme.Q. Jl microsc. Sci. 79, 493–507.Google Scholar
  35. —— 1938. A cytological study of the pleuropodia ofMelanoplus differentialis (Orthoptera, Acrididae) which furnishes new evidence that they produce the hatching enzyme.J. Morph. 63, 181–205.Google Scholar
  36. Strindberg, H., 1913. Embryologische Studien an Insekten.Z. wiss. Zool. 106.Google Scholar
  37. Tiegs, O. W., 1940. The embryology and affinities of the Symphyla, based on a study ofHanseniella agilis.Q. Jl microsc. Sci. 82, 1–225.Google Scholar
  38. —— &Murray, F. V., 1937. The embryonic development ofCalandra oryzae.Q. Jl microsc. Sci. 80, 195–284.Google Scholar
  39. Uzel, J., 1898. Studien über die Entwicklung der apterygoten Insekten. Friedländer, Berlin, 58 pp.Google Scholar
  40. Verhoeff, K. W., 1910. Über die Felsenspringer, Machiloidea. III. Die EntwicklungsstufenZool. Anz. 36, 385–399.Google Scholar
  41. —— 1911.... Die schuppenlosen Entwicklungsstufen und die Orthomorphose.Zool. Anz. 38, 254–263.Google Scholar
  42. Viallanes, H., 1891. Sur quelques points de l'histoire du développement embryonnaire de la Mante religieuse(Mantis religiosa).Annls. Sci. nat. 11, 238–328.Google Scholar
  43. Weber, H., 1952. Morphologie, Histologie und Entwicklungsgeschichte der Articulaten.Fortschr. Zool. 9, 18–231.Google Scholar
  44. Weygold, P., 1959. Die Embryonalentwicklung des AmphipodenGammarus pulex pulex L.Zool. Jb. (Abt. Anat. Ontog. Tiere) 77, 51–110.Google Scholar
  45. Wiggelsworth, V. B., 1959. A simple method for cutting sections in the 0,5 to 1µ range, and for sections of chitin.Q. Jl microsc. Sci. 100, 315–320.Google Scholar
  46. Woodland, J. T., 1957. A contribution to our knowledge ofLepismatid developmentJ. Morph. 101, 523–577.Google Scholar

Copyright information

© Biologischen Anstalt Helgoland 1969

Authors and Affiliations

  • O. Larink
    • 1
  1. 1.Abteilung EmbryologieZoologisches Institut der Universität KielKiel

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