Untersuchungen zur thermischen Resistenz von Polioviren
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Zusammenfassung
Die thermische Inaktivierung von Poliomyelitisviren Typ I (Stamm Mahoney), die in Gewebekulturen trypsinaufgeschlossener Affennieren vermehrt worden waren, wurde im Temperaturbereich um +45°C untersucht. Es ergab sich, daß in den Virussuspensionen enthaltene niedermolekulare Substanzen die thermische Inaktivierung stark beschleunigen können. Diese Substanzen konnten durch Dialysen entfernt werden, wodurch die thermische Resistenz erheblich verstärkt wurde. Es gelang außerdem durch Komplexbildner wie EDTA und, wenn auch in schwächerem Maß, KCN, die beschleunigende Wirkung auf die thermische Inaktivierung aufzuhalten. Der Zusatz von Aminosäuren hatte einen analogen Effekt. Da diese Befunde auf die mögliche Beteiligung von Metallionen hinwiesen, wurde eine Reihe von Salzen untersucht. Dabei wurde gefunden, daß Salze des dreiwertigen Chroms eine stark beschleunigende Wirkung auf die thermische Inaktivierung besitzen.
Summary
Studies on the thermal inactivation of poliomyelitis virus type 1 (Mahoney), prepared in monolayer tissue cultures of trypsinized monkey kidney cells, were made at a temperature of 45° C. Evidence was furnished of the presence in the virus fluid of substances of low molecular weight, which increase the rate of thermal inactivation. These substances could be eliminated by dialysis, whereby thermal resistance became greatly increased. Inhibition of thermal inactivation was possible by addition of chelating agents as EDTA and partly by KCN. Addition of aminoacids had a similar effect. The data pointed to the possible role of metal ions. Therefore we tested the effect of some metal salts. Cr+3 — salts increased the rate of thermal inactivation.
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Literatur
- 1.Adams, M. H.: Stability of Viruses in Solutions of Salts. Bull. N. Y. Acad. Med.24, 544 (1948).Google Scholar
- 2.Adams, M. H.: A Heat Resistant Mutant of Bacterial Virus T 5. Bull. N. Y. Acad. Med.26, 566 (1950).Google Scholar
- 3.Davisson, E. O., H. M. Powell, J. O. McFarlane, B. Hodgson, R. L. Stone, andC. G. Culbertson: The Preservation of Poliomyelitisvaccine with stabilized Merthiolate. J. Lab. Clin. Med.47, 8–19 (1956).Google Scholar
- 4.Dostal, V., R. Haas, B. Thomssen undE. Buschmann: Über den Einfluß verschiedener Filterschichten auf die Viruskonzentration bei der Filtration von Poliovirus. (Im Druck.)Google Scholar
- 5.Edney, M. andF. M. Burnel: Influence of Ions in Thermal Inactivation and Modification of an Influenza Virus. Austr. J. Exp. Biol. and Med. Sci.30, 129 (1952).Google Scholar
- 6.Haas, R., L. Körner, V. Dostal undH. Schweinsberg: Inaktivierung von Poliomyelitisvirus mit Formaldehyd. Z. Hyg. Infekt. Kr.143, 490–512 (1957).Google Scholar
- 7.Kaplan, A. S. andJ. L. Melnick: Effect of Milk and Cream on the Thermal Inactivation of Human Poliomyelitis Virus. J. Publ. Health42, 525 (1952).Google Scholar
- 8.Klein, M., J. H. Brewer, E. J. Perez, andB. Bay: The Inactivation of Influenza Virus by Mercurials a. Reactivation by Sodiumthioglycolate a. BAL. Fed. Proc. Baltimore7, 307 (1948).Google Scholar
- 9.Pohjanpelto, P.: Stabilization of Poliovirus by Cystine. Virology6, 472–487 (1958).Google Scholar
- 10.Pollard, E. andM. Reaume: Thermal Inactivation of Bacterial Viruses. Arch. Biochem. Biophys.32, 278 (1951).Google Scholar
- 11.Reed, L. J. andH. A. Muench: A Simple Method of Estimating Fifty per cent Endpoint. Am. J. Hyg.27, 493 (1938).Google Scholar
- 12.Robinson, L. K.: Effect of Heat and of pH on Strains of Coxsackie-Virus. Proc. Soc. exp. Biol et Med.75, 580 (1950).Google Scholar
- 13.Youngner, J. S.: Thermal Inactivation Studies with Different Strains of Poliovirus. J. Immunol.78, 282 (1957).Google Scholar
- 14.Youngner, J. S.: Monolayer Tissue Culture I. Preparation and Standardization of Suspensions of Trypsin-dispersed Monkey Kidney Cells. Proc. Soc. Exp. Biol. et Med.85, 202 (1954); III. Propagation of Poliomyelitisvirus in Cultures of Trypsin-dispersed Monkey Kidney Cells. J. Immunol.73, 392 (1954).Google Scholar