Pflügers Archiv

, Volume 327, Issue 4, pp 349–363 | Cite as

Bestimmung von Gewebs-O2-Drucken und pH-Werten beim experimentellen hämorrhagischen Schock unter Verwendung der Bauchhöhle als viscerales Tonometer

  • Klaus Knorpp
Article
Received:
  • 14 Downloads

Zusammenfassung

Die Bauchhöhle narkotisierter weißer Neuseeland-Kaninchen wurde mit 40 ml Ringer-Lösung gefüllt und als viscerales Tonometer zur Bestimmung von mittleren Gewebe-\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \)- und pH-Werten verwendet. Bei einer Kontrollgruppe betrug der O2-Druck der Peritonealflüsigkeit 60±3 Torr, der pH-Wert etwa 7,40; der pH-Wert entsprach dem des gemischt-venösen Blutes. Bei der Gruppe mit experimentellem hämorrhagischen Schock fiel der O2-Druck der Peritonealflüssigkeit nach Entzug von 35% des totalen Blutolumens (1%/min) im Mittel auf 35 Torr ab, war aber noch signifikant höher als im gemischt-venösen Blut. Der pH-Wert der Peritonealflüssigkeit war nach 180 min Schockdauer mit 7,10 nicht signifikant niedriger als derjenige des gemischt-venösen Blutes (7,20). Bei der Schockgruppe fanden sich signifikante Korrelationen zwischen\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \)- und pH-Werten der Peritonealflüssigkeit einerseits und des arteriellen und gemischtvenösen Blutes andererseits. Die Bestimmung peritonealer\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \)- und pH-Werte scheint demnach Aussagen über beim härmorrhagischen Schock eintretende Änderungen der Gewebedurchblutung zu ermöglichen.

Schlüsselwörter

Gewebs-\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) Peritonealflüssigkeit Schock Kaninchen 

Determination of tissue\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) and pH values in an experimental hemorrhagic shock, using the peritoneal cavity as a visceral tonometer

Summary

The peritoneal cavity of anesthetized white New-Zeeland rabbits was filled with 40 ml of Ringer solution and used as a visceral tonometer to determine average tissue\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) and pH values. In the control group the peritoneal\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) was 60±3 Torr. The peritoneal pH was about 7.40 and not significantly different from the pH of mixed venous blood. After withdrawal of 35% of the estimated blood volume (1%/min),\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) of the peritoneal fluid dropped to about 35 Torr, being significantly higher than\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) of the mixed venous blood (27 Torr). After a shock period of 180 min the pH value of the peritoneal fluid was about 7.10. The pH value of the mixed venous blood was 7.20, an insignificant difference. A significant correlation could be established in the shock group between pH and\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) of the peritoneal fluid and arterial and mixed venous blood respectively. It is concluded from these results, that in a state of hemorrhagic shock the measurement of\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) and pH in the peritoneal fluid is a possible tool to obtain information on tissue perfusion.

Key-Words

Tissue-\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) Peritoneal Fluid Shock Rabbit 
This is a preview of subscription content, log in to check access.

Preview

Unable to display preview. Download preview PDF.

Unable to display preview. Download preview PDF.

Literatur

  1. 1.
    Altman, P. L., Dittmer, D. S. (Hrsg.): Respiration and circulation, p. 196. Federation of American Societies for Experimental Biology, Bethesda (Maryland) 1971.Google Scholar
  2. 2.
    Barlow, G., Knott, D. H.: Hemodynamic alterations after 30 minutes of pentobarbital sodium anaesthesia in dogs. Amer. J. Physiol.207, 764–766 (1964).Google Scholar
  3. 3.
    Bartels, H., Harms, H.: Sauerstoffdissoziationskurven von Säugetieren. Pflügers Arch. ges. Physiol.268, 334–365 (1959).Google Scholar
  4. 4.
    Bergmeyer, H. U.: Methoden der enzymatischen Analyse. Weinheim/Bergstr.: Verlag Chemie 1962.Google Scholar
  5. 5.
    Bergofsky, E. H.: Determination of tissue O2 tensions by hollow visceral tonometers: effect of breathing enriched O2 mixtures. J. clin. Invest.43, 193–200 (1964).Google Scholar
  6. 6.
    — Jacobson, J. H., Fishman, A. P.: The use of lymph for the measurement of gas tensions in interstitial fluid and tissues. J. clin. Invest.41, 1971–1980 (1962).Google Scholar
  7. 7.
    Blümel, G.: Über die Freisetzung von biologische aktiven Polypeptiden im Schock. Langenbecks Arch. klin. Chir.319, 981–985 (1967).Google Scholar
  8. 8.
    Boda, D., Muranyi, L., Belay, M., Eck, E.: Tolerance to anoxia in mice and newborn rabbits influenced by peritoneal dialysis. Life Sci.8, 1009–1014 (1969).Google Scholar
  9. 9.
    Cater, D. B.: The significance of oxygen tension measurements in tissues. Aus: A symposium on oxygen measurements in blood and tissues and their significance, pp. 155–172. London: Churchill 1966.Google Scholar
  10. 10.
    Chalmers, J. P., Korner, P. I., White, S. W.: The effects of hemorrhage in the unanaesthetized rabbit. J. Physiol. (Lond.)189, 367–391 (1967).Google Scholar
  11. 11.
    Corday, E., Irving, D. W., Gold, H., Bernstein, H., Skelton, B. T.: Mesenteric vascular insufficiency. Intestinal ischemia induced by remote circulatory disturbances. Amer. J. Med.33, 365–376 (1962).Google Scholar
  12. 12.
    Ellis, S.: The metabolic effects of epinephrine and related amines. Pharmacol. Rev.8, 485–562 (1956).Google Scholar
  13. 13.
    Gregersen, M. I.: Blood volume. Ann. Rev. Physiol.13, 397–412 (1951).Google Scholar
  14. 14.
    Groth, C.-G., Löfström, B., Werner, B.: Oxygen tension of thoracic duct lymph in man. Acta chir. scand.129, 586–590 (1965).Google Scholar
  15. 15.
    Halmagyi, D. F. J., Starzecki, B., Horner, G. J.: Humoral transmission of cardiorespiratory changes in experimental lung embolism. Circulat. Res.14, 546–554 (1964).Google Scholar
  16. 16.
    Hardaway, R. M.: Clinical management of shock, Springfield, Ill.: Ch. C. Thomas 1968.Google Scholar
  17. 17.
    Harichaux, P., Moline, J., Delmaire, M., Baillet, J.: Evolution de\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) et\(P_{{\text{CO}}_{\text{2}} } \)/dans un liquide extracellulaire (peritoneal) experimental. J. Physiol. (Paris)60, Suppl. 2, 456–457 (1968).Google Scholar
  18. 18.
    Himms-Hagen, J.: Sympathetic regulation of metabolism., Pharmacol. Rev.19, 367–461 (1967).Google Scholar
  19. 19.
    Hunt, Th. K., Goldstick, Th. K., Conolly, W. B.: Tissue oxygen tensions during controlled hemorrhage. Surg. Forum18, 3–4 (1967).Google Scholar
  20. 20.
    Jones, C. E., Crowell, J. W., Smith, E. E.: Determination of mean tissue oxygen tensions by implanted perforated capsules. J. appl. Physiol.26, 630–633 (1969).Google Scholar
  21. 21.
    Kleihauer, E., Betke, K.: Zur Hämoglobinbestimmung mittels Cyanhämiglobin nach Betke und Savelsberg. Ärztl. Lab.3, 202–205 (1957).Google Scholar
  22. 22.
    Knorpp, K.: Über den Einfluß von Diazepam (Valium®) auf den Verlauf eines hämorrhagischen Schocks bei Kaninchen. Naunyn-Schmiedebergs Arch. Pharmak.267, 457–467 (1970).Google Scholar
  23. 23.
    — Bauer, Ch., Rathschlag-Schaefer, A. M., Bartels, H.: Einfluß von Plasmaersatzlösungen auf die Atmungsfunktion des Blutes beim hämorrhagischen Schock des wachen Kaninchens. Arzneimittel-Forsch.20, 853–856 (1970).Google Scholar
  24. 24.
    — Pixberg, H. U.: Blutvolumenbestimmung mit51Cr bei reinrassigen, weißen Neuseeland-Kaninchen. Pflügers Arch.315, 357–367 (1970).Google Scholar
  25. 25.
    Kunze, K.: Die lokale, kontinuierliche Sauerstoffdruckmessung in der menschlichen Muskulatur. Pflügers Arch. ges. Physiol.292, 151–160 (1966).Google Scholar
  26. 26.
    Lefer, A. M., Martin, J.: Mechanism of the protective effect of corticosteroids in hemorrhagic shock. Amer. J. Physiol.216, 314–320 (1969).Google Scholar
  27. 27.
    Lübbers, D. W.: The oxygen pressure field of the brain and its significance for the normal and critical oxygen supply of the brain. In: Oxygen transport in blood and tissues, pp. 124–139. Stuttgart: G. Thieme 1968.Google Scholar
  28. 28.
    — Kessler, M.: Oxygen supply and rate of tissue respiration. In: Oxygen transport in blood and tissue, pp. 90–99. Stuttgart: G. Thieme 1968.Google Scholar
  29. 29.
    Moll, W., Bartels, H.: Eine kritische Prüfung der offenen und der geschlossenen Methode zur Bestimmung des Sauerstoffverbrauchs nach Veränderung der inspiratorischen Sauerstoffkonzentration. Pflügers Arch. ges. Physiol.271, 583–594 (1960).Google Scholar
  30. 30.
    Nagy, S., Barankay, T., Tarnoky, K.: Effect of hemorrhagic shock on oxygen tension of thoracic duct lymph. Acta physiol. Acad. Sci. hung.35, 87–92 (1969).Google Scholar
  31. 31.
    Nunn, J. F., Freeman, J.: Problems of oxygenation and oxygen transport during haemorrhage. Anaesthesia19, 206–216 (1964).Google Scholar
  32. 32.
    Rahn, H.: Gasometric method for measurements of tissue oxygen tension. Fed. Proc.16, 685–688 (1957).Google Scholar
  33. 33.
    Shoemaker, W. C.: Shock. Chemistry, physiology and therapy. Springfield, Ill.: Ch. C. Thomas 1967.Google Scholar
  34. 34.
    Siggaard-Andersen, O., Engel, K.: A new acid-base nomogram. An improved method for the calculation of the relevant blood acid-base data. Scand. J. clin. Lab. Invest.12, 177–186 (1960).Google Scholar
  35. 35.
    Silver, I. A.: The measurement of oxygen tension in tissues. Aus.: A symposium on oxygen measurements in blood and tissues and their significance, pp. 135 to 153. London: Churchill 1966.Google Scholar
  36. 36.
    Thauer, R., Wegler, K.: Die Kreislaufwirkung der gebräuchlichsten, tierexperimentellen Narkotika. Naunyn-Schmiedebergs Arch. exp. Path. Pharmack.200, 84–117 (1942).Google Scholar
  37. 37.
    Van Liew, H. D.: Tissue\(P_{{\text{O}}_{\text{2}} } \) and\(P_{{\text{CO}}_{\text{2}} } \) estimation with rat subcutaneous gas pockets. J. appl. Physiol.17, 851–855 (1962).Google Scholar
  38. 38.
    Van Slyke, D. D., Plazin, J. Micromanometric analyses. Baltimore: Williams and Wilkins Comp. 1961.Google Scholar
  39. 39.
    Watts, D. T., Bragg, A. D.: Blood epinephrine levels and automatic reinfusion of blood during hemorrhagic shock in dogs. Proc. Soc. exp. Biol. (N. Y.)96, 609–612 (1957).Google Scholar
  40. 40.
    Weber, E.: Grundriß der biologischen Statistik Stuttgart: G. Fischer 1967.Google Scholar
  41. 41.
    Weisser, H.: unveröffentlicht.Google Scholar
  42. 42.
    Witte, C. L., Clauss, R. H., Dumont, A. E.: Respiratory gas tensions of thoracic duct lymph: an index of gas exchange in splanchnic tissues. Ann. Surg.166, 254–262 (1967).Google Scholar

Copyright information

© Springer-Verlag 1971

Authors and Affiliations

  • Klaus Knorpp
    • 1
  1. 1.Institut für Physiologie der Medizinischen Hochschule HannoverHannoverDeutschland

Personalised recommendations