Archives of oto-rhino-laryngology

, Volume 237, Issue 3, pp 273–277

Intracellular and extracellular ion content of the endolymphatic sac

  • H. Amano
  • A. Orsulakova
  • C. Morgenstern
Article

Summary

The Cl activity in the endolymph of the endolymphatic sac and in the cochlear duct was measured with Cl sensitive double-barreled microelectrodes. The Cl activity in the endolymphatic sac fluid was lower than in the cochlear duct. A small, positive, DC potential was recorded in the endolymphatic sac. During anoxia, the DC potential decreased while the Cl activity in the endolymphatic sac increased. The K/Na ratio in the epithelial cells and subepithelial tissue of endolymphatic sac was measured using the LAMMA technique. The K/Na ratio in the epithelial cells decreased after ethacrynic acid injection (60 mg/kg i.V.). These findings suggest that chloride in the endolymphatic sac is actively transported inward and outward.

Key words

Endolymphatic sac Cl activity Anoxia LAMMA microprobe analysis 

Intra- und extrazellularer Ionengehalt des Saccus endolymphaticus

Zusammenfassung

Die Chloridaktivität der Endolymphe im Ductus cochlearis und im Saccus endolymphaticus wurde mit ionensensitiven doppelläufigen Mikroelektroden in vivo gemessen. Die Chloridaktivität im Saccus war geringer als im cochlearen Teil des Endolymphschlauches. Ein geringes positives Potential wurde im Saccus endolymphaticus gemessen. Während Hypoxie fiel das DC-Potential im Saccus während die Chloridaktivität anstieg. Das K/Na Verhältnis in den Epithelzellen und im subepithelialen Raum wurde intracellular mit der LAMMA-Technik gemessen. Das K/Na Verhältnis war höher in den Epithelzellen der Pars rugosa, als im subepithelialen Raum und erniedrigte sich, wenn man Etacrynsäure (60 mg/kg i.v.) injizierte. Die Ergebnisse deuten darauf hin, daß im Saccus endolymphaticus ein aktiver Chloridtransport besteht.

Schlüsselwörter

Saccus endolymphaticus Cl Aktivität Anoxie LAMMA Mikroanalyse 

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References

  1. Guild SR (1927) The circulation of the endolymph. Laryngoscope 37: 649–652Google Scholar
  2. Hallpike CS, Cairns H (1938) Observation on the pathology of Ménière's syndrome. Proc R Soc Med 16: 55–74Google Scholar
  3. Kimura RS (1968) Experimental production of endolymphatic hydrops. Otolaryngol Clin North Am 1: 457–471Google Scholar
  4. Kimura RS (1969) Distribution, structure and function of dark cells in the vestibular labyrinth. Ann Otol Rhinol Laryngol 78: 542–560Google Scholar
  5. Kimura RS, Schuknecht HF (1965) Membranous hydrops in the inner ear of the guinea pig after the obliteration of the endolymphatic sac. Pract Oto Rhino Laryngol (Basel) 27: 343–354Google Scholar
  6. Lundquist PG (1976) Aspects on endolymphatic sac morphology and function. Arch Otorhinolaryngol 212: 231–240Google Scholar
  7. Miyamoto H, Morgenstern C (1979) Potassium level in endolymphatic sac of guinea pigs in vivo. Arch Otorhinolaryngol 222: 77–78Google Scholar
  8. Orsulakova A, Kaufmann R, Morgenstern C, D'Haese M (1981) Cation distribution of the cochlea wall (stria vascularis). Fresenius Z Anal Chem 808: 221–223Google Scholar
  9. Portmann G (1921) Recherches sur la physiologie du sac et du canal endolymphatiques. Valeur fonctionnelle de l'organe endolymphatique des selaciens. CR Soc Biol 85: 1070–1072Google Scholar
  10. Sellick PM, Johnstone BM (1975) Production and role of inner ear fluid. Prog Neurobiology 5: 337–362Google Scholar
  11. Silverstein H (1966) Biochemical and physiological studies of the endolymphatic sac in the cat. Laryngoscope 37: 649–652Google Scholar

Copyright information

© Springer-Verlag 1983

Authors and Affiliations

  • H. Amano
    • 1
    • 2
  • A. Orsulakova
    • 1
    • 2
  • C. Morgenstern
    • 1
    • 2
  1. 1.ENT-ClinicUniversity of DüsseldorfDüsseldorf 1Federal Republic of Germany
  2. 2.Dept. of OtolaryngologyKansai Medical University OsakaOsakaJapan

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