L'épiphyse du Hérisson (Erinaceus europaeus L.) mâle

I. Les pinéalocytes et leur variations ultrastructurales considérées au cours du cycle sexuel
  • Paul Pevet
  • Michel Saboureau
Article
Received:

Résumé

Les pinéalocytes (au sens strict: Wolfe, 1965) de l'épiphyse du Hérisson mâle, examinés au microscope électronique, ont été comparés à ceux d'autres Mammifères. Ils possèdent un ou plusieurs prolongements cellulaires, dont la terminaison en «massue» est caractéristique. A l'intérieur du noyau, un nucléole de forme alvéolaire facilite l'identification de ce type cellulaire. Dans le périkaryon, des mitochondries, des ribosomes, quelques lysosomes. et inclusions lipidiques sont présents. Des cils et de rares «rubans circonscrits par des vésicules» (Collin, 1969) sont observés. Le réticulum endoplasmique est peu abondant et est constitué, essentiellement, par la forme lisse. L'appareil de Golgi sécrét de petites vésicules claires de 300 à 450 Å de diamètre et des vésicules à coeur dense de 400 à 1500 Å de diamètre. La migration de ces grains vers l'extrémité des prolongements a été mise en évidence. Pendant les phases du cycle sexuel, on observe une évolution de certains éléments des pinéalocytes.

D'une part, pendant la phase de mise au repos sexuel, il y a formation, à partir du réticulum, d'un système rectiligne composé de cavités et de vésicules, puis évolution de l'ensemble vers une forme lamellaire concentrique,

D'autre part, on note l'apparition de «condensations cytoplasmiques» très importantes durant une partie de la phase de pleine activité sexuelle.

The pineal organ of the male hedgehog (Erinaceus europaeus L.)

I. Ultrastructural variations occurring in pinealocytes during the sexual cycle

Summary

The pinealocytes of the male hedgehog have been examined with the electron microscope, and have been compared with those of other mammals. They possess one or more cytoplasmic processes which end in a terminal club. In the nucleus, an alveolar nucleolus facilitates the identification of this cellular type. In the perikaryon, mitochondria, ribosomes, lysosomes and lipid inclusions are present. Cilia and rare “rubans circonscrits par des vésicules” (Collin, 1969) are observed. The endoplasmic reticulum is not very abundant and essentially consists of the smooth type. Small clear vesicles (350–450 Å) and dense-cored vesicles (400–1500 Å) are produced by the Golgi apparatus. The migration of these densecored vesicles towards the terminal processes has been observed. It has been shown that there occurs a change of some cytoplasmic structures during the sexual cycle of this animal.

On the one hand, during the period of sexual quiescence, a reticular formation—composed of lamellae and vesicles—is observed in the cytoplasm. This formation is transformed into annular lamellae.

On the other hand, during the period of maximal sexual activity, just after the first mating period, numerous “cytoplasmic condensations” are observed.

Key words

Pineal Hedgehog Sexual cycle 
This is a preview of subscription content, log in to check access.

Preview

Unable to display preview. Download preview PDF.

Unable to display preview. Download preview PDF.

Bibliographie

  1. Allanson, M.: The reproductive processes of certain mammals. Seasonal variation in the reproductive organs of the male hedgehog. Philos. Trans. B 223, 227–303 (1934)Google Scholar
  2. Anderson, E.: The anatomy of bovine and ovine pineals. Light and electron microscopic studies. J. Ultrastruct. Res., Suppl. 8, 1–80 (1965)Google Scholar
  3. Arstila, A.U.: Electron microscopic studies on the structure and histochemistry of the pineal gland of the rat. Neuroendocrinology. 2, suppl. 6, 1–101 (1967)Google Scholar
  4. Arstila, A.U., Hopsu, V.K.: Studies on the rat pineal gland. I) Ultrastructure. Ann. Acad. Sci. fenn. 113, 1–21 (1964)Google Scholar
  5. Belt, W.D., Cavazos, L.F.: Fine structure of the interstitial cells of Leydig in the boar. Anat. Rec. 158, 333–350 (1967)Google Scholar
  6. Bostelman, W.: Das ultrastrukturelle und enzymhistochemische Verhalten der Rattenzirbeldrüse nach Funktionsphasenwechel der Dauerbeleuchtung und ständigen Dunkelheit. Endokrinologie 53–56, 365–384 (1968)Google Scholar
  7. Carr, I., Carr, J.: Membranous whorls in testicular interstitial cell. Anat Rec. 144, 143–147 (1962)Google Scholar
  8. Clabough, J.W.: Foetal development and functional significance of the epiphysis cerebri in rats and hamsters: a light and electron microscopic investigation. Thèse (1969)Google Scholar
  9. Clabough, J.W.: Ultrastructural features of the pineal gland in normal and light deprived golden hamsters. Z. Zellforsch. 114, 151–164 (1971)Google Scholar
  10. Collin, J.P.: Contribution à l'étude de l'organe pinéal. De l'épiphyse sensorielle à la glande pinéale: modalités de transformation et implications fonctionnelles. Ann. Stat. Biol. de Besse-en-Chandesse, Suppl. 1, 1–359 (1969)Google Scholar
  11. Collin, J.P.: Differentiation and regression of the cells of the sensory line in the epiphysis cerebri. In: The Pineal gland, Symposium of the CIBA foundation, London 1970. (G.E.W. Wolstenholme and J. Knight, eds. p. 79–125. Churchill Livingstone 1971Google Scholar
  12. Collin, J.P., Ariëns-Kappers, J.: Electron microscopic study of pineal innervation in lacertilians. Progr. Brain Res. 11, 35–106 (1968)Google Scholar
  13. Collin, J.P., Meiniel, A.: L'organe pinéal. Etudes combinées ultrastructurales, cytochimiques (monoamines) et expérimentales, chez Testudo mauritanica: grains denses des cellules de la lignée «sensorielle» chez les Vertébrés. Arch. Anat. micr. Morph. exp. 60, 269–304 (1972)Google Scholar
  14. Courrier, R.: Etude sur le déterminisme des caractères sexuels secondaires chez quelques Mammifères à l'activité testiculaire périodique. Arch. Biol. (Liege) 37, 173–334 (1927)Google Scholar
  15. Czyba, J.C.: Les fluctuations de la fécondité chez le Hamster doré (Mesocricetus auratus Watern.) au cours de l'année. C. R. Soc. Biol. 162, 113–116 (1968)Google Scholar
  16. Das Gupta, T.K.: The anatomy of the pineal organ in the syrian hamster. Acta anat. (Basel) 71, 28–35 (1968)Google Scholar
  17. Dubois, P., Girod, C.: Formations lamellaires concentriques dans des cellules antéhypophysaires chez le Hamster doré. Z. Zellforsch. 115, 196–211 (1971)Google Scholar
  18. Gerry, H.: Contribution à l'étude de la cytologie antéhypophysaire. (Recherches chez un Mammifère hivernant). Thèse (Lyon) (1969)Google Scholar
  19. Girod, C., Cure, N., Dubois, P.: Mise en évidence au microscope optique et au microscope électronique de trois catégories de cellules gonadotropes antéhypophysaires chez le Hérisson mâle (Erinaceus europaeus L.). C. R. Soc. Biol. (Paris) 159, 2202–2205 (1967)Google Scholar
  20. Girod, C., Dubois, P.: Etude cytologique et ultrastructurale de l'antéhypophyse du hérisson pendant la période d'hivernation. C. R. Ass. Anat. 138, 585–589 (1967)Google Scholar
  21. Glauert, A.M., Glauert, R.H.: Araldite as an embedding medium for electron microscopy. J. biophys. biochem. Cytol. 4, 191–194 (1958)Google Scholar
  22. Gusek, W., Buss, H., Wartenberg, H.: Weitere Untersuchungen zur Feinstruktur der Epiphysis cerebri normaler und vorbehandelter Ratten. Progr. Brain Res. 10, 317–330 (1965)Google Scholar
  23. Gusek, W., Santoro, A.: Elektronenoptische Beobachtungen zur Ultramorphologie der Pinealzellen bei der Ratte. Biol. lat. (Milano) 13, 451–464 (1960)Google Scholar
  24. Hopsu, V.K., Arstila, A.U.: An apparent somato-somatic synaptic structure in the pineal gland of the rat. Exp. Cell Res. 37, 484–487 (1965)Google Scholar
  25. Ito, T., Matsushima, S.: Electron microscope observation on the mouse pineal, with particular emphasis on its secretory nature. Arch. histol. jap. 30. 1–15 (1968)Google Scholar
  26. Kappers-Ariëns, J.: The mammalian pineal organ. J. Neuro-visc. Rel., Suppl. 9, 140–184 (1969)Google Scholar
  27. Karasek, M.: The cilia in the white rat pineal gland. J. Microscopie 9, 1103–1104 (1970)Google Scholar
  28. Karasek, M.: The role of the pineal body in mammals. Polish. Endocrinology 22, 315–327 (1971)Google Scholar
  29. Kelly, D.E., Smith, S.W.: Fine structure of the pineal organs of the adult frog, Rana pipiens. J. Cell Biol. 22, 653–674 (1964)Google Scholar
  30. Leonhardt, H.: Über axonähnliche Fortsätze, Sekretbildung und Extrusion der hellen Pinealozyten des Kaninchens. Z. Zellforsch. 82, 307–320 (1967)Google Scholar
  31. Lues, G.: Die Feinstruktur des Zirbeldrüse normaler, trächtiger und experimentell beeinflußter Meerschweinchen. Z. Zellforsch. 114, 38–60 (1971)Google Scholar
  32. Mann, T.: Male sex hormone and its role in reproduction. Recent Progr. Hormone Res. 12, 353–358 (1956)Google Scholar
  33. Motta, P.: Electron microscope study on the human lutein cell with special reference to its secretory activity. Z. Zellforsch. 98, 233–247 (1969)Google Scholar
  34. Murakami, M.: Elektronenmikroskopische Untersuchungen am interstitiellen Gewebe des Rattenhodens, unter besonderer Berücksichtigung der Leydigschen Zwischenzellen. Z. Zellforsch. 98, 139–156 (1966)Google Scholar
  35. Oksche, A., Kirschstein, H.: Weitere elektronenmikroskopische Untersuchungen am Pinealorgan von Phoxinus laevis (Teleostei, Cyprinidae). Z. Zellforsch. 112, 572–588 (1971)Google Scholar
  36. Oksche, A., Vaupel-von Harnack, M.: Elektronenmikroskopische Untersuchungen am Stirnorgan von Anuren (Zur Frage der Lichtrezeptoren). Z. Zellforsch. 59, 239–288 (1963a)Google Scholar
  37. Oksche, A., Vaupel-von Harnack, M.: Elektronenmikroskopische Untersuchungen an der Epiphysis cerebri von Rana esculenta L. Z. Zellforsch. 59, 592–614 (1963b)Google Scholar
  38. Pellegrino de Iraldi, A.: Granulated vesicles in the pineal gland of the mouse. Z. Zellforsch. 101, 408–418 (1969)Google Scholar
  39. Peyre, A.: Cycles génitaux et corrélation hypophyso-génitales chez trois Insectivores Européens. In: Cycles génitaux saisonniers de Mammifères sauvages, p. 133–149. Paris: Masson & Cie 1968Google Scholar
  40. Povtliege, P.: L'influence des oestrogènes sur l'ultrastructure de greffons hypophysaires chez la Ratte. J. Microscopie 4, 485–496 (1965)Google Scholar
  41. Reiter, R.J.: Pineal control of a seasonal reproductive rhythm in male golden hamsters exposed to natural daylight and temperature. Endocrinology 92, 2, 423–430 (1973)Google Scholar
  42. Reynolds, E.S.: The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy. J. Cell Biol. 17, 208–212 (1963)Google Scholar
  43. Romijn, H.J.: Structure and innervation of the pineal gland of the rabbit, Oryctolagus cuniculus L., with some functional considerations. Thèse (Amsterdam) (1972)Google Scholar
  44. Saba, P., Gambassi, G., Novi, A.M., Luisi, M.: Electron microscopy of the Leydig cells and hormone assays in Klinefelter's syndrome. Endokrinologie 55, 129–144 (1969)Google Scholar
  45. Saboureau, M.: Quelques nouveaux critères biochimiques de l'activité génitale chez le Hérisson mâle. Thèse (Poitiers) (1969)Google Scholar
  46. Saboureau, M., Peyre, A.: Le décalage des activités endocrine et spermatogénétique du testicule au cours du réveil printanier chez le Hérisson mâle. C. R. Soc. Biol. (Paris) 11, 2364–2367 (1970)Google Scholar
  47. Sano, I., Mashimo, T.: Elektronenmikroskopische Untersuchungen an der Epiphysis cerebri beim Hund. Z. Zellforsch. 69, 129–139 (1966)Google Scholar
  48. Sheridan, M.N., Reiter, R.J.: The fine structure of the hamster pineal gland. Amer. J. Anat. 122, 357–376 (1968)Google Scholar
  49. Sheridan, M.N., Reiter, R.J.: Observations in the pineal system in the hamster. II) Fine structure of the deep pineal. J. Morph. 131, 163–177 (1970)Google Scholar
  50. Takahashi, K.: Light and electron microscopic studies on the pineal organ of the goldfish Carassius auratus L.. Bull. Fac. Fisheries Hokkaido University 20, 143–157 (1969)Google Scholar
  51. Trier, J.S.: The fine structure of the parathyroid gland. J. biophys. biochem. Cytol. 4, 13–22 (1958)Google Scholar
  52. Venable, J.M., Coggeshall, W.: Simplified lead stain for use in electron microscopy. J. Cell Biol. 25, 407–408 (1965)Google Scholar
  53. Vivien, J.H.: Ultrastructure des constituants de l'épiphyse de Tropidonotus natrix. C. R. Acad. Sci. (Paris) 258, 3370–3372 (1964)Google Scholar
  54. Vivien, J.H., Roels, B.: Ultrastructures synaptiques dans l'Epiphyse des Chéloniens. Présence de rubans synaptiques au niveau des articulations entre cellules pseudosensorielles et terminaisons nerveuses dans l'Epiphyse de Pseudemys scripta elegans et Pseudemys picta. C. R. Acad. Sci. (Paris) serie D, 266, 600–603 (1968)Google Scholar
  55. Wartenberg, H.: The mammalian pineal organ: electron microscopic studies on the fine structure of pinealocytes, glial cells and on the perivascular compartement. Z. Zellforsch. 86, 74–97 (1968)Google Scholar
  56. Wartenberg, H., Gusek, W.: Licht- und elektronenmikroskopische Beobachtungen über die Struktur der Epiphysis cerebri des Kaninchens. Progr. Brain Res. 10, 296–316 (1965)Google Scholar
  57. Welser, J.P., Hinsman, E.J., Stromberg, H.W.: Fine structure of the canine pinealocytes. Amer. J. vet. Res. 29, 587–599 (1968)Google Scholar
  58. Wolfe, D.E.: The epiphyseal cell: an electron-microscopic study of its intercellular relationship an intracellular morphology in the pineal body of the albino rat. Progr. Brain Res. 10, 332–376 (1965)Google Scholar
  59. Wurtman, R.J., Axelrod, J., Kelly, D.E.: The pineal. New-York-London; Academic Press 1968Google Scholar

Copyright information

© Springer-Verlag 1973

Authors and Affiliations

  • Paul Pevet
    • 1
    • 2
    • 3
    • 4
  • Michel Saboureau
    • 1
    • 2
    • 3
  1. 1.Laboratoire de Physiologie ComparéePoitiersFrance
  2. 2.Service Général de Microscopie Electronique Appliquée à la BiologiePoitiersFrance
  3. 3.Beauvoir sur NiortCentre d'Etudes Biologiques des Animaux SauvagesFrance
  4. 4.Netherlands Central Institute for Brain ResearchAmsterdam -0- Pays-BasThe Netherlands

Personalised recommendations