Advertisement

Histochemie

, Volume 19, Issue 3, pp 235–247 | Cite as

Enzymhistotopochemische Studien an inaktiven Salzdrüsen von Hausenten (Anas platyrhynchus)

I. Histiogramme einiger Oxydoreduktasen
  • Wolfgang Kühnel
  • Gottfried Burock
  • Gerhard Petry
Article

Zusammenfassung

In der sog. inaktiven Salzdrüse von einheimischen Hausenten werden eine Reihe von Oxydoreduktasen aus der Glykolysekette, dem Citronensäurezyklus und der Atmungskette, sowie die Enzyme G-6-PDH, GDH, (β-HBDH und GLUDH mit histochemischen Methoden lokalisiert. Die Epithelien der Zwischenstücke, Zentralkanäle und Aus-führungsgänge sind mit hohen Aktivitäten der glykolytischen Oxydoreduktasen und der NADPH2-liefernden Enzyme ausgestattet. Die Dehydrogenasen des Citratzyklus besitzen vergleichsweise geringere Aktivitäten in diesen Zellen. Das histochemisch faßbare Enzymverteilungsmuster läßt echte Syntheseleistungen der Salzdrüse vermuten.

Enzyme histochemical studies on the salt gland of ducks (Anas platyrhynchus)

I. Enzyme pattern of oxydoreductases

Summary

The salt glands of ducks were subjected to histochemical examination. The following enzymes were demonstrated and localized: Oxydo-reductases of glycolysis, of the citric acid cycle, the respiratory chain and the pentosephosphat shunt; furthermore, GDH, β-HBDH and GLUDH. Of particular interest are the central tubulus, the intermediate portion, the central canal and the duct system. The epithelial cells of the intermediate portion and the central canal show a high level of activity of glycolytic oxydo-reductases and of enzymes yielding NADPH2. Only relatively low activity, however, was found of the dehydrogenases of the citric acid cycle.

Preview

Unable to display preview. Download preview PDF.

Unable to display preview. Download preview PDF.

Literatur

  1. Abe, B., and N. Shimizu: Histochemical method for demonstrating aldolase. Histochemie 4, 209–212 (1964).Google Scholar
  2. Abel, J. H., and R. A. Ellis: Histochemical and electron microscopic observations on the salt secreting lacrymal glands of marine turtles. Amer. J. Anat. 118, 337–358 (1967).Google Scholar
  3. Ballantyne, B., and W. G. Wood: A histochemical and biochemical investigation of β-glucuronidase activity in the quiescent and secreting supra-orbital gland of Anas domesticus. J. Physiol. (Lond.) 191, 89–90 (1967).Google Scholar
  4. Bonting, S. L., L. L. Caravaggio, M. R. Canady, and N. M. Hawkins: Studies on sodium-potassium-activated adenosintriphosphatase. XI. The salt gland of the herring gull. Arch. Biochem. 106, 49–56 (1964).Google Scholar
  5. Brandau, H., u. W. Luh: Die Histotopik von Oxydoreduktasen des Intermediärstoffwechsels im interstitiellen Gewebe des menschlichen Ovars. Ein Beitrag zur funktionellen Morphologie der interstitiellen Zellen. Arch. Gynäk. 200, 407–420 (1965).Google Scholar
  6. Bücher, Th., u. H. Klingenberg: Wege des Wasserstoffs in der lebendigen Organisation. Angew. Chem. 70, 552–570 (1958).Google Scholar
  7. Burock, G., W. Kühnel u. G. Petry:Über die inaktive Salzdrüse von Enten (Anas platyrhynchus). Histologische und histochemische Untersuchungen. Z. Zellforsch. 97, 608–618 (1969).Google Scholar
  8. Burstone, M. S.: Histochemical demonstration of cytochrome oxidase with new amine reagents. J. Histochem. Cytochem. 8, 63–70 (1959).Google Scholar
  9. Change, B., Cn.-P. Lee, R. Oshino, and G. D. V. van Rossum: Properties of mitochondria isolated from herring gull salt gland. Amer. J. Physiol. 206, 461–468 (1964).Google Scholar
  10. Fletcher, G. L., I. M. Stainer, and W. N. Holmes: Sequential changes in the adenosinetriphosphatase activity and the electrolyte excretory capacity of the nasal glands of the duck (Anas platyrhynchos) during the period of adaptation to hypertonic saline. J. exp. Biol. 47, 375–391 (1967).Google Scholar
  11. Halkebston, J. D. K., J. Eichhorn, and O. Hechtler: TPNH requirement for cholesterol tide chain deavage in adrenal cortex. Arch, biochem. 85, 287–289 (1959).Google Scholar
  12. Hess, R., D. G. Scarpelli, and G. E. A. Pearse: The cytochemical localization of oxidative enzymes. II. Pyridine nucleotide-linked dehydrogenases. J. biophys. biochem. Cytol. 4, 753–760 (1958).Google Scholar
  13. Hokin, M. R.: Studies on a Na++K+-dependent, oubain-sensitive adenosine triphosphatase in the avian salt gland. Biochim. biophys. Acta (Amst.) 77, 108–120 (1963).Google Scholar
  14. Hurwitz, L. S., and L. J. Rubinstein: A qualitative study of tetrazolium salt reduction in slide histochemistry. New York: 3rd Int. Congr. Histochem. Cytochem. 1968.Google Scholar
  15. Komnick, H.: Elektronenmikroskopische Untersuchungen zur funktionellen Morphologie des lonentransportes in der Salzdrüse von Larus argentatus. I. Teil: Bau und Peinstruktur der Salzdrüse. Protoplasma (Wien) 56, 274–314 (1963a).Google Scholar
  16. : Elektronenmikroskopische Untersuchungen zur funktionellen Morphologie des lonentransportes in der Salzdrüse von Larus argentatus. II. Teil: Funktionelle Morphologie der Blutgefäße. Protoplasma (Wien) 56, 385–419 (1963b).Google Scholar
  17. : Elektronenmikroskopische Untersuchungen zur funktionellen Morphologie des lonentransportes in der Salzdrüse von Larus argentatus. III. Teil: Funktionelle Morphologie der Tubulusepithelzellen. Protoplasma (Wien) 56, 605–636 (1963c).Google Scholar
  18. : Elektronenmikroskopische Untersuchungen zur funktionellen Morphologie des lonentransportes in der Salzdrüse von Larus argentatus. V. Teil: Experimenteller Nachweis der Transportwege. Z. Zellforsch. 60, 163–203 (1963d).Google Scholar
  19. : Elektronenmikroskopische Untersuchungen zur funktionellen Morphologie des lonentransportes in der Salzdrüse von Larus argentatus. IV. Teil: Funktionelle Morphologie der Epithelzellen des Sammelkanals. Protoplasma (Wien) 58, 96–127 (1964).Google Scholar
  20. Kühnel, W.: Enzymhistochemische Untersuchungen an der Harderschen Drüse des Kaninchens. Histochemie 7, 230–244 (1966).Google Scholar
  21. Mc Farland, Z., K. D. Martin, and R. A. Freedland: The activity of selected soluble enzymes in the avian nasal salt gland. J. cell. comp. Physiol. 65, 237–241 (1965).Google Scholar
  22. Nachlas, M. M., D. G. Walker, and A. M. Seligman: A histochemical method for the demonstration of diphosphopyridine nucleotide diaphorase. J. biophys. biochem. Cytol. 4, 29–38 (1958a).Google Scholar
  23. : The histochemical localization of triphosphopyridine nucleotide diaphorase. J. biophys. biochem. Cytol. 4, 467–474 (1958b).Google Scholar
  24. Pette, D., u. H. Brandau: Enzym-Histiogramme und Enzymaktivitätsmuster der Rattenleber. Nachweis Pyridinnukleotid-spezifischer Dehydrogenasen im Gelschicht-Verfahren. Enzym, biol. clin. 6, 79–122 (1966).Google Scholar
  25. Reiss, I.: Grundlagen und neuere Ergebnisse des histochemischen Nachweises von Dehydrogenasen mit Tetrazoliumsalzen. Z. wiss. mikr. 68, 169–189 (1967).Google Scholar
  26. Rudolph, G., u. H. J. Klein: Histochemische Darstellung und Verteilung der Glukose-6-Phosphat-Dehydrogenase in normalen Rattenorganen. Histochemie 4, 238–251 (1964).Google Scholar
  27. : Nachweis und Bedeutung des Pentosephosphat-Cyclus in endokrinen Organen, epithelialen Geweben und dem zentralen Nervensystem. Frankfurt. Z. Path. 74, 587–598 (1965).Google Scholar
  28. Scothorne, R. J.: Histochemical study of the nasal (supraorbital) gland of the duck. Nature (Lond.) 182, 732 (1958).Google Scholar
  29. : Histochemical study of succinic dehydrogenase in the nasal (salt secreting) gland of the Aylesbury duck. Quart. J. exp. Physiol. 44, 329–332 (1959a).Google Scholar
  30. : The nasal glands of birds: a histochemical and histological study of the inactive gland of the domestic duck. J. Anat. (Lond.) 93, 246–256 (1959b).Google Scholar
  31. : Alkaline and acid phosphatases in the salt glands of birds. J. Anat. 94, 581–582 (1960).Google Scholar
  32. Schmidt-Nielsen, K.: Salt glands. Sci. Amer. 200, 109–116 (1959).Google Scholar
  33. : The salt-secreting glands of marine birds. Circulation 21, 955–967 (1960).Google Scholar
  34. Schönbaum, E. M., M. Davidson, E. R. Large, and W. B. G. Casselman: Further studies on the metabolism of glucose and the formation of corticosteroids in vivo. Canad. J. Biochem. 37, 1209–1214 (1959).Google Scholar
  35. Wood, W. G., and B. Ballantyne: Sodium ion transport and β-glucuronidase activity in the nasal gland of Anas domesticus. J. Anat. (Lond.) 103, 277–287 (1968).Google Scholar
  36. Wrobel, K.-H. u. W. Kühnel: Zur Fermenthistochemie von Uterindrüsen und Uterusepithel in der geburtsreifen Schafplacenta. Z. Anat. Entwickl.-Gesch. 125, 357–366 (1966).Google Scholar
  37. : Die Histotopik einiger Oxydoreduktasen im Hoden von Hund und Katze. Histochemie 10, 208–215 (1967).Google Scholar
  38. : Enzymhistochemie am Hoden der Haussäugetiere. I. Oxydoreduktasen im Hoden von Ziege und Schwein. Berl. Münch. tierärztl. Wschr. 81, 86–90 (1968).Google Scholar
  39. Zbbe, E., A. Delbrück u. Th. Bücher: Glycerophosphatdehydrogenase unter zellphysiologischen Aspekten. Ber. ges. Physiol. 189, 115–116 (1957a).Google Scholar
  40. : Glycerophosphat-dehydrogenase unter zellphysiologischen Aspekten. Angew. Chem. 69, 65 (1957b).Google Scholar
  41. : Über den Glycerin-1-P-Cyclus im Flugmuskel von Locusta migratoria. Biochem. Z. 331, 254–272 (1959).Google Scholar

Copyright information

© Springer-Verlag 1969

Authors and Affiliations

  • Wolfgang Kühnel
    • 1
  • Gottfried Burock
    • 1
  • Gerhard Petry
    • 1
  1. 1.Anatomisches Institut (Lehrstuhl II) der Universität Marburg a. d. LahnGermany

Personalised recommendations